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一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取DNA的方法與流程

2023-12-04 19:21:06 1


本發明涉及植物dna製備技術領域,具體來說是一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取dna的方法。



背景技術:

核酸是構成生命體中基本遺傳物質的主要化合物,從核酸分子水平系統深入的研究是認識各種生命現象的基礎。植物dna的提取主要用於基因文庫構建、pcr分析及southern雜交等,因此高質量的dna的獲得對於功能基因組學以及遺傳學研究具有重要意義。目前,在植物提取dna的研究中,已經發展了多種方法,成功地從植物葉片、愈傷組織、組培苗、果實、初皮部等組織器官中提取出dna。這些方法多採用新鮮或冷凍的材料,但對於野外,尤其是遠距離採樣,攜帶冰壺或液氮非常不方便,這需要在提取dna前對樣本作一些特殊的處理,有研究發現通過矽膠乾燥後的片可用於植物基因組dna的提取,但是不論幼嫩的葉片或成熟的葉片,雖葉片迅速失水,但在植物葉片組織中還含有大量的多糖、多酚、蛋白和酯類等植物次生代謝產物及降解的dna,這使得提取dna的常出現產量低、質量差、易降解,影響了dna質量和純度,不能被限制性內切酶酶切,嚴重的甚至不能作為模板進行pcr擴增,用新鮮葉片材料提取有著很大的差異。

生態建設、環境保護日益受到大家的關注,植物是重要的自然資源環境要素,對於維持生態平衡和發展經濟有著重要作用,然而隨著科技的發展,我們的生活日益提高.可是,我們的地球卻受到了危害,森林資源遭受嚴重的破壞,許多珍貴的植物資源遭到毀滅性的打擊,因此,植物dna的提取研究對植物的就地保護、種質資源收集保存及種源培育工作尤為重要。

目前,關於植物dna提取方法的報導絕大部分都是在sds法和ctab法基礎上進行改良,但都無法擺脫用研磨棒或玻璃棒對樣品逐個研磨的操作步驟,且提取步驟繁瑣耗時,傳統的ctab法是目前應用最廣泛的dna提取方法,但是該方法在提取植物乾燥葉片時,殘留了大量的蛋白糖類物質,影響到後續的pcr擴增、遺傳多態性分析研究,迄今,還未見針對植物乾燥葉片中提取高質量dna的研究報導。



技術實現要素:

本發明的目的是為了解決現有技術中的提取複雜繁瑣、無法提取高質量dna的缺陷,提供一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取dna的方法來解決上述問題。

本發明公開了一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取dna的方法,具體步驟為:

(1)、取20mg乾燥海葉片組織加入到2.0ml冷凍研磨離心管中,並放入1個已滅菌鋼珠,液氮冷凍3-5min,將離心管放入研磨儀中研磨8-12min,得到乾粉;

(2)、將步驟(1)得到的乾粉加入500ullp1和6ulrnase,渦旋震蕩1min,室溫放置15min,期間上下顛倒5-10次;

(3)、向步驟(2)中產品加入130ul緩衝液lp2,渦旋震蕩1min;

(4)、將步驟(3)中的離心管置於離心機中,12000rpm(~13400*g)離心5min,將上清液轉移至新的1.5ml離心管中;

(5)、向步驟(4)得到的上清液中加入1.5倍的緩衝液lp3,充分震蕩混勻15-30sec;

(6)、將步驟(5)得到的溶液及沉澱全部加入同一個吸附柱cb3中,將吸附柱放入收集管中,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重新將吸附柱cb3放回收集管中;

(7)、向吸附柱中加入600ul漂洗液pw,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重複此步驟一次;

(8)、將吸附柱放回收集管中,12000rpm(~13400*g)離心3min,倒掉廢液,將吸附柱放入新的1.5ml離心管中,室溫放置5-10min,徹底晾乾吸附柱中的殘餘漂洗液,得到吸附膜;

(9)、向吸附膜中間部位懸空加入50ul無核酸酶水,室溫放置5min,12000rpm(~13400*g)離心5min,取出並丟棄吸附柱;

(10)、對dna濃度及純度檢測,-20℃保存樣本。

作為優選,所述的步驟(1)中,在將離心管放入研磨儀之前,需要對研磨儀先預冷;

作為優選,所述的步驟(1)中,在將乾燥海葉片組織加入冷凍研磨離心管之前,先使用無菌水配置的80%乙醇進行衝洗,晾乾後,將海葉片組織剪碎;

作為優選,所述的步驟(2)中,所述的rnase的濃度為10mg/ml;

作為優選,所述的步驟(4)中,在將上清液轉移至新的1.5ml離心管的過程中,不要碰到沉澱;

作為優選,所述的步驟(9)中,在將無核酸酶水加入吸附膜中間部位時,需要先將無核酸酶水預熱至65℃。

本發明相比現有技術具有以下優點:

根據本發明,在傳統試劑盒與研磨法的基礎上,靈活調整步驟,使乾燥葉片快速高效的研磨成粉末抽提dna,能夠從微量乾燥葉片中提取高質量的基因組dna,提取比較便捷。

附圖說明

圖1是本發明的實施例與ctab法抽提dna的瓊脂糖凝膠電泳圖;

圖2是改良試劑盒法抽提dna,2ul稀釋10倍稀釋後dnapcr電泳圖。

具體實施方式

下面對本發明的實施例作詳細說明,本實施例在以本發明技術方案為前提下進行實施,給出了詳細的實施方式和具體的操作過程,但本發明的保護範圍不限於下述的實施例。

本發明公開了一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取dna的方法,具體步驟為:

(1)、取20mg乾燥海葉片組織加入到2.0ml冷凍研磨離心管中,並放入1個已滅菌鋼珠,液氮冷凍3-5min,將離心管放入研磨儀中研磨8-12min,得到乾粉;

(2)、將步驟(1)得到的乾粉加入500ullp1和6ulrnase,渦旋震蕩1min,室溫放置15min,期間上下顛倒5-10次;

(3)、向步驟(2)中產品加入130ul緩衝液lp2,渦旋震蕩1min;

(4)、將步驟(3)中的離心管置於離心機中,12000rpm(~13400*g)離心5min,將上清液轉移至新的1.5ml離心管中;

(5)、向步驟(4)得到的上清液中加入1.5倍的緩衝液lp3,充分震蕩混勻15-30sec;

(6)、將步驟(5)得到的溶液及沉澱全部加入同一個吸附柱cb3中,將吸附柱放入收集管中,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重新將吸附柱cb3放回收集管中;

(7)、向吸附柱中加入600ul漂洗液pw,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重複此步驟一次;

(8)、將吸附柱放回收集管中,12000rpm(~13400*g)離心3min,倒掉廢液,將吸附柱放入新的1.5ml離心管中,室溫放置5-10min,徹底晾乾吸附柱中的殘餘漂洗液,得到吸附膜;

(9)、向吸附膜中間部位懸空加入50ul無核酸酶水,室溫放置5min,12000rpm(~13400*g)離心5min,取出並丟棄吸附柱;

(10)、對dna濃度及純度檢測,-20℃保存樣本。

作為優選,所述的步驟(1)中,在將離心管放入研磨儀之前,需要對研磨儀先預冷;

作為優選,所述的步驟(1)中,在將乾燥海葉片組織加入冷凍研磨離心管之前,先使用無菌水配置的80%乙醇進行衝洗,晾乾後,將海葉片組織剪碎;

作為優選,所述的步驟(2)中,所述的rnase的濃度為10mg/ml;

作為優選,所述的步驟(4)中,在將上清液轉移至新的1.5ml離心管的過程中,不要碰到沉澱;

作為優選,所述的步驟(9)中,在將無核酸酶水加入吸附膜中間部位時,需要先將無核酸酶水預熱至65℃。

實施例1

本發明公開了一種改良試劑盒法從微量乾燥葉片中提取dna的方法,具體步驟為:

(1)、取同種植物的不同生長時期乾燥海葉片組織20mg,使用無菌水配置的80%乙醇進行衝洗,並將晾乾葉片剪碎並轉移至2.0ml冷凍研磨離心管中,並放入1個已滅菌鋼珠,液氮冷凍4min,並將離心管放入液氮預冷研磨儀中研磨10min,得到乾粉;

(2)、將步驟(1)得到的乾粉加入500ullp1和6ulrnase,渦旋震蕩1min,室溫放置15min,期間上下顛倒7次;

(3)、向步驟(2)中產品加入130ul緩衝液lp2,渦旋震蕩1min;

(4)、將步驟(3)中的離心管置於離心機中,12000rpm(~13400*g)離心5min,將上清液轉移至新的1.5ml離心管中;

(5)、向步驟(4)得到的上清液中加入1.5倍的緩衝液lp3,充分震蕩混勻20sec;

(6)、將步驟(5)得到的溶液及沉澱全部加入同一個吸附柱cb3中,將吸附柱放入收集管中,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重新將吸附柱cb3放回收集管中;

(7)、向吸附柱中加入600ul漂洗液pw,12000rpm(~13400*g)離心30sec,倒掉廢液,重複此步驟一次;

(8)、將吸附柱放回收集管中,12000rpm(~13400*g)離心3min,倒掉廢液,將吸附柱放入新的1.5ml離心管中,室溫放置7min,徹底晾乾吸附柱中的殘餘漂洗液,得到吸附膜;

(9)、向吸附膜中間部位懸空加入50ul無核酸酶水,室溫放置5min,12000rpm(~13400*g)離心5min,取出並丟棄吸附柱;

(10)、對dna濃度及純度檢測,-20℃保存樣本。

作為優選,所述的步驟(1)中,在將離心管放入研磨儀之前,需要對研磨儀先預冷;

作為優選,所述的步驟(2)中,所述的rnase的濃度為10mg/ml;

作為優選,所述的步驟(4)中,在將上清液轉移至新的1.5ml離心管的過程中,不要碰到沉澱;

作為優選,所述的步驟(9)中,在將無核酸酶水加入吸附膜中間部位時,需要先將無核酸酶水預熱至65℃。

採用nanodrop測定提取dna的濃度及純度,瓊脂糖凝膠電泳檢測提取dna的完整性,經測定樣本的a260/a280在1.8左右,從nanodrop和瓊脂糖電泳可以看出,對比採用傳統的ctab法提取乾燥葉片dna,儘管可獲得dna,但dna的純度和濃度均很低,質量很差,相對的,採用實施例的方法可在相同樣品量的前提下,提取獲得純度和濃度高,完整性好的基因組dna,在後續的pcr作為模板進行高效擴增,尤其適用於比較稀缺珍貴的樣本。

以上顯示和描述了本發明的基本原理、主要特徵和本發明的優點。本行業的技術人員應該了解,本發明不受上述實施例的限制,上述實施例和說明書中描述的只是本發明的原理,在不脫離本發明精神和範圍的前提下本發明還會有各種變化和改進,這些變化和改進都落入要求保護的本發明的範圍內。本發明要求的保護範圍由所附的權利要求書及其等同物界定。

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