鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因zh0-ii及其原核表達載體和應用的製作方法

2023-04-24 07:53:41

專利名稱：鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因zh0-ii及其原核表達載體和應用的製作方法
技術領域：
本發明屬於微生物基因工程領域，具體涉及一種鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因及其高效表達鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶蛋白ZHO-1I的原核表達載體pGEX-4T-l-ZM -JJ及其在製備海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白中的應用。
背景技術：
近年來，由於能源危機的加劇，環境問題日益突出，以海藻生物質為原料生產生物能源越來越受到重視。大型海藻含有豐富碳水化合物，如海藻酸，開發相應的技術可將其轉化為生物乙醇，產量高，且容易預處理。目前，海藻酸降解的方法可分為三大類:一類是化學降解法，目前廣泛採用的是酸水解法，這種方法操作步驟繁瑣，反應條件劇烈。此外，還有過氧化氫氧化降解法；第二類是物理降解法，例如超聲降解海藻酸；第三類是海藻酸裂解酶酶解法，酶法降解海藻酸條件溫和，過程可控，得率高，綠色安全，環境友好，作用機理明確，產物確定，可以根據具體目的產物要求選擇單一或組合使用不同底物專一性的酶製劑。目前，海藻酸裂解酶的生產大多是依靠海藻酸分解菌。雖然野生型海藻酸分解菌能有效的獲得一定量的酶蛋白，但產量很低成本較高，難達到實際應用要求。因此，利用基因工程手段對海藻酸裂解酶基因進行異源表達是提高海藻酸裂解酶產量的最有效途徑。1993年,Boyd等首次克隆了Psoudomoims alginovora海藻酸裂解酶的編碼基因algL並在大腸桿菌中進行了表達，其粗蛋白活性達到146U/mg。1996年Frederic PsGudomormsalginovora中編碼海藻酸裂解酶的基因aly在大腸桿菌中表達，並且其催化活性達到97U/mgo 2009 年，Gaofei Vnxan 等在Pseudoalteromonassp.CY24 中克隆得到了海藻酸裂解酶基因alyPI，在大腸桿菌中表達得到一個58KD的蛋白，催化活性達到了 121.6U/mg。2012年,Hwan Hee Park等利用sp.MJ-3的基因組構建基因文庫,篩選得到了一段海藻酸裂解酶的基因，並將其在大腸桿菌中表達，得到了一種對PolyM和polyG都有活性的雙功能酶。
目前，國內外所發現的海藻酸分解菌的種類眾多，主要分布於海洋細菌、土壤細菌和真菌等，但被成功克隆及異源表達的海藻酸裂解酶並不多，傳統方法一般利用海藻酸鈉分解菌，通過發酵生產分離、純化得到海藻酸裂解酶，這種方法存在野生菌產酶量低、酶與降解產物難於分離，生產成本高等問題，成為酶解技術大量製備褐藻膠低聚糖的制約性技術難題，限制了海藻酸裂解酶的推廣使用，且大多數海藻酸裂解酶只能單一的利用PloyG或者PloyM，本發明從鞘氨醇單胞菌ZHO中成功克隆出海藻酸裂解酶基因並進行了異源表達和蛋白純化的研究，本發明所獲得的重組海藻酸裂解酶ZHO-1I具有廣泛的底物特異性，既能利用PloyG又能利用PloyM為底物,是一種具有廣闊運用前景的雙功能酶,本發明為進一步研究海藻酸裂解酶分子機理，進而推廣到工業生產奠定基礎
發明內容
本發明的目的是提供一種鞘氨醇單胞菌的海藻酸裂解酶基因ZHO-1I，該基因核苷酸序列如SEQ ID NO:1所不,該基因編碼如SEQ ID NO:2所不氣基酸序列的蛋白質。
本發明另一目的是提供一種鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因^% -//的原核表達載體，該載體含有海藻酸裂解酶基因ZM -/八Ptac啟動子和終止子、細菌核糖體結合位點RBS、GST標籤，ZHO-1I基因的上遊為Ptac啟動子，Ptac啟動子的下遊有可被IPTG誘導的操作子序列，緊靠乃 -//基因的起始密碼子上遊的是一個GST標籤序列，可生成易溶於水的融合表達蛋白，之後通過凝血酶可將GST標籤切除而不影響目的蛋白的結構活性。本發明中所述海藻酸裂解酶基來源於鞘氨醇單胞菌sp.ZHO。本發明的另一目的是將鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因ZHO-1I的原核表達載體PGEX-4T-1-ZM -//應用在製備海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白中。為了實現本發明的上述目的，本發明提供了如下的技術方案:
1、鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶ZHO-1I基因的獲得及原核表達載體的構建
(1)根據鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶N端和C端的保守序列和原核表達載體pGEX-4T-l多克隆酶切位點，設計如下I對特異引物:
ZH0-2-F:5，-GGATCCGCACCGGCC GCAGCGCACTCGGCC-3，,
ZH0-2-R:5』 -GCGGCCGCTCAGCTCGAGTGCTTTACGTGGAG-3』，在 h下遊引物的 5』 端分別加A BamH I和Not I酶切位點(下劃線為酶切位點)；提取鞘氨醇單胞菌sp.ZHO的基因組，使用上述引物進行擴增，得到海藻酸裂解酶ZHO-1I的全長DNA序列；
(2)回收並純化海藻酸裂解酶ZHO-1I全長基因片段，並將其連接到Pmdl9-T載體上，採用鹼裂解法提取質粒DNA，通過酶切檢測獲得重組質粒pMD19-ZM -JJ ；
(3)構建原核載體pGEX-4T-l-Z挪-JJ，用BamHI和Not I雙酶切_19-ZH0_II和PGEX-4T-1，並回收純化ZHO-1I基因片段以及載體片段PGEX-4T-1，然後連接、轉化、抽提質粒進行單、雙酶切檢測，獲得原核表達載體pGEX-4T-l-ZM -JJ，進行測序比對分析，將測序結果進行生物信息學分析。2、海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的原核表達
使用熱刺激法將PGEX-4T-1-Z挪-JJ轉入大腸桿菌BL21 (DE3)中，在終濃度ImM IPTG誘導下篩選最佳表達條件，並在最適條件下進行大量表達；
3、海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白純化
收集菌體，進行超聲破碎，過GST瓊脂糖凝膠柱進行純化，收集純化後的蛋白，純化後的蛋白用於ZHO-1I蛋白表達SDS-PAGE檢測及下一階段實驗。4、海藻酸裂解酶ZHO-1I的特性研究
對純化後的海藻酸裂解酶ZHO-1I進行特性研究，內容包括最適PH，最適溫度，熱穩定性等，本發明獲得的重組海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白，其最適pH為6.5，最適溫度為47°C，在50°C, IOmin損失50%的酶活性；本發明中使用的測定方法為常規的海藻酸裂解酶活性測定方法，測定反應底物在A235nm處吸光值的變化。本發明對海藻酸裂解酶基因進行了擴增，並進一步原核表達和蛋白純化，獲得的ZHO-1I蛋白，現有技術海藻酸裂解酶野生菌株通過發酵培養到產酶，至少需要3天時間，而本發明的基因工程菌株只需要6h即可得到最大量的目的蛋白，本發明所獲得的重組海藻酸裂解酶ZHO-1I具有廣泛的底物特異性，既能利用PloyG又能利用PloyM為底物，是一種具有廣闊運用前景的雙功能酶，本發明解決了現有的產海藻酸裂解酶的菌株的酶產量比較低的問題，也為進一步對裂解酶ZHO-1I進行機理及機制研究奠定了基礎。


圖1為本發明鞘氨醇單胞菌ZHO基因組DNA的檢測示意圖；其中M是DNA marker ；
I是基因組DNA ；
圖2為本發明海藻酸裂解酶基因ZHO-1I的TA克隆策略示意圖3為本發明TA克隆重組質粒mm-ZHO-1I的電泳檢測及酶切檢測示意圖，其中:A圖為質粒的電泳檢測示意圖，圖中:MSDNA marker ; 1-2為pMD19-ZM -JJ;B圖為重組質粒的酶切檢測示意圖，圖中:M為DNA marker ；1為BamH I單酶切的pMD19WUJ質粒；2為Not I單酶切的pMD19WU質粒；3-4為BamH I與Not I雙酶切的pMD19WU質粒；圖4為本發明海藻酸裂解酶基因的原核表達載體構建策略示意 圖5為本發明重組質粒PGEX-4T-1-Z挪-JJ的電泳檢測示意圖，圖中:M是DNA marker ；1-8 是 pGEX-4T-l-Z挪-JJ ；
圖6為本發明重組質粒pGEX-4T-l-Z挪-JJ的單酶切檢測示意圖，圖中:M是DNAmarker ；1~2是BamH I單酶切的pGEX-4T_l_Z挪-JJ質粒；3_4是Not I單酶切的PGEX-4T-1-ZW-1I 質粒；
圖7為本發明重組質粒pGEX-4T-l-Z挪-JJ的雙酶切檢測示意圖，圖中:M是DNAmarker ;1是未酶切的pGEX-4T_l_Z挪-JJ質粒；2_5 是Not I與BamH I雙酶切的PGEX-4T-1-ZW-1I 質粒；
圖8為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I表達的SDS-PAGE檢測示意圖，圖中:M是蛋白marker ；1是pGEX_4T_l質粒在37 °C、經IPTG誘導後，6h的細菌總蛋白；
2是pGEX-4T-l-Z挪-JJ質粒在37 °C、未經IPTG誘導後，6h的細菌總蛋白；3_9是PGEX-4T-1-ZHO-1I質粒在37 °C、經終濃度ImM IPTG誘導後，0、2、4、6、8、10、12h的細菌總蛋白；
圖9為本發明海藻酸裂解酶的純化電泳示意圖，圖中:M是蛋白marker ；1是純化前的細菌上清蛋白；2是純化後的流川液；3是純化後的洗滌液:4是用還原性穀胱甘肽洗脫後的洗脫液一 ；5是用還原性穀胱甘肽洗脫後的洗脫液二 ；
圖10為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的最適pH示意圖，圖中:黑色方塊曲線為ZHO-1I蛋白在pH5.0-8.0磷酸鈉緩衝液中的活性示意圖；另一黑色倒三角曲線為ZHO-1I蛋白在pH8.0-9.0 Tris-HCl緩衝液中的活性示意 圖11為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的最適溫度示意 圖12為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的熱穩定性示意 圖13為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的金屬離子影響示意 圖14為本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的底物特異性示意圖。
具體實施例方式
下面結合附圖和實施例對本發明作進一步詳細說明，但本發明保護範圍不局限於所述內容，實施例中方法如無特殊說明的採用常規方法，使用的實際如無特殊說明的使用常規市售試劑或按常規方法配置的試劑。本實施例中試劑主要分為分子生物學實驗試劑，各種限制性內切酶、pfu DNA聚合酶、dNTP等為日本寶生物工程有限公司(大連)及北京莊盟國際生物基因科技有限公司產品，質粒提取試劑盒購自生工生物工程(上海)股份有限公司，其餘試劑均為國產分析純；儀器均為分子生物學以及基因工程實驗室常用儀器；所有引物序列均在上海生工合成。實施例1:鞘氨醇單胞菌sp.ZHO基因組DNA的製備與檢測 本發明所用的鞘氨醇單胞菌sp.ZHO (ZHO)為本實驗室篩選菌株,鞘氨
醇單胞菌ZHO基因組DNA的製備採用普通細菌基因組提取方法，具體內容如下:取2mL過夜培養菌液於4°C, 4000rpm離心2min,棄盡上清液，收集菌體；加入IOOul Solution I懸菌，然後加入30ul 10%SDS ；lul 20mg/ml蛋白酶K，混勻，37°C孵育I小時；加入IOOul 15mol/L NaCl，混勻;加入 20ul CTAB/NaCl 溶液(CTAB 10%,NaCl 0.7mol/L)，混勻，65°C，10 分鐘;加入等體積酚/氯仿/異戊醇25:24:1)混勻，12000rpm離心5分鐘；取上清，加入2倍體積無水乙醇，0.1倍體積3mol/LNa0AC，_20°C放置30分鐘；12000rpm離心10分鐘；沉澱加A 70%乙醇洗滌；沉澱乾燥後，溶於20ul TE，_20°C保存；取2ul基因組DNA用1%的瓊脂糖凝膠進行電泳檢測，結果(見圖1)說明提取到的基因組DNA質量符合要求。實施例2:海藻酸裂解酶基因ZHO-1I的擴增與TA克隆:
海藻酸裂解酶基因乃 -//的擴增及TA克隆的策略如圖2所示，根據鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶N端和C端的保守序列，並設計一對特異引物，序列如下:
ZH0-2- F:GG ATCCGCACCGGCCGCAGCGCACTCGGCCZH0-2- R:GCGGCCGCTCAGCTCGAGTGCTTTACGTGGAG
5』端引物有GGATCC特徵序列，並由此形成BamH I酶切位點；3』端加GCGGCC特徵序列，形成Not I酶切位點；
在PCR反應混合液中加入IOng的鞘氨醇單胞菌ZHO基因組DNA作為模板，同時加入50ng 的特異性引物 ZH0-2-R 和 ZH0-2_F、1.8uldNTP (IOmM), 2.5ul 的 Pfu 反應緩衝液和
0.15ul的pfu (5U/ul)聚合酶(北京莊盟國際生物基因科技有限公司)，加入雙蒸水使終體積為20ul ;在PCR儀上於94°C加熱5分鐘，然後按照94°C、45秒，69°C、30秒，72°C、2.5分鐘的程序進行30個循環的反應，最後在72°C延長反應10分鐘的程序進行PCR反應擴增得到ZHO-1I基因，反應完成後，通過瓊脂糖凝膠電泳分離PCR擴增產物，回收並純化ZHO-1I全長基因DNA (0.7Kb)，然後用寶生物(TaKaRa)的TA克隆試劑盒亞克隆到pMD19-T (大連寶生物公司)載體上，實驗操作按試劑盒的說明書進行，反應過夜後用反應混合液轉化大腸桿菌感受態JM109 (購自北京莊盟國際生物基因科技有限公司)，採用鹼裂解法提取質粒DNA，用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測其大小(圖3A)，選取大小和理論值相符的重組質粒進行酶切檢測。分別用BamH I和Not I單酶切重組質粒，連接成功的重組質粒pMD19-ZH0_II有一條大小為3.3kb左右的ZHO-1I基因DNA片段，進一步進行雙酶切，連接成功的重組質粒PMD19-ZH0-1I有兩條片段，一條大小為2.6kb左右，另一條為0.7kb左右(圖3B)。測序分析證明重組質粒載體中插入的全長基因序列正確，再次確認是連接成功的質粒後，重新轉化大腸桿菌JM109，挑單個菌落進行液體培養，用試劑盒純化質粒_\9-ZH0-1I。實施例3:原核表達載體PGEX-4T-1-Z挪-JJ的構建PGEX-4T-1-Z挪-JJ 的構建策略如圖 4 所示，用 BamH I (TaKaRa)和 Not I (TaKaRa)切開純化的原核表達載體PGEX-4T-1 (購自GE Healthcare公司)和pMD19-ZM -JJ，通過瓊脂糖凝膠電泳分離已切開的載體和插入片段，從凝膠中回收PGEX-4T-1被切割後產生的載體片段 pGEX-4T-l (4.9kb)及 pMD19-ZM -JJ 被切割產生的 ZH0-1I 基因的 DNA 片段(0.7kb)，然後用寶生物(TaKaRa)的連接酶試劑盒連接pGEX_4T_l載體片段和ZH0-1I基因的DNA片段產生原核表達載體PGEX-4T-1-ZM -//，用連接反應混合物轉化高效率(IO8)的大腸桿菌感受態細胞(JM109，北京莊盟國際生物基因科技有限公司)，把轉化後的大腸桿菌塗於加油氨節黴素(Amp, 100ug/ml)的平板上,於37°C,過夜培養,篩選Amp抗性重組子菌落,從Amp抗性重組子菌落中提取質粒(圖5)，用BamH 1.Not I (TaKaRa)進行雙酶切檢測，連接成功的質粒在瓊脂糖凝膠電泳圖上產生4.9kb和0.7kb左右大小的兩條帶(因為BamH I,Not I在載體處都只有單一識別位點，故雙酶切質粒應有兩個片段)(圖6-7)。將連接成功的質粒載體pGEX-4T-l-ZM -JJ重新轉化大腸桿菌JM109，挑單個菌落進行液體培養，用試劑盒純化質粒 PGEX-4T-1-Z挪-JJ。實施例4:海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的表達與表達條件的優化
用原核表達載體pGEX-4T-l-ZM -JJ轉化大腸桿菌BL21的感受態細胞(天根生化科技)，挑取單菌落加入2mL LB (含有Am p 100mg/L)中，37°C過夜培養(0D6。。約為1.5)，加入終濃度為1.0mM的IPTG分別於37°C誘導0_12小時後，離心收集菌體，去掉上清液，加入5XSDS-PAGE上樣緩衝液(Sample loading buffer),於100°C加熱10分鐘煮沸菌體，冰浴冷卻後於4°C離心(12000rpm) 10分鐘，取上清作SDS-PAGE，根據文獻資料和軟體分析預測目的融合蛋白大小為52kDa左右(GST融合標籤為26kDa)，採用12%分離膠，SDS-PAGE電泳參看《分子克隆實驗指南(第三版)》，SDS-PAGE電泳結果表示在37°C誘導6小時後ZHO-1I蛋白表達量達到最大值，故選取6h為最佳誘導時間(見圖8)。實施例5:海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的純化，具體步驟如下:
a、菌體破碎:將在37°C、ImMIPTG下大量誘導表達6h的IL菌體，經超聲破碎菌體(工作 5s,休息 5s) 20min ；
b、收集上清和沉澱:將菌體破碎液4°C、12000rpm離心20min，分別保留上清和沉
澱；
C、蛋白破碎上清液使用0.22uM濾器進行過濾，除去雜質；
d、GST Sefinose Resin柱的預處理:將柱子中保存用的20%乙醇放出；10倍柱體積 PBS 緩衝液(4.3mM Na2HPO4,1.4mM KH2PO4,137mM NaCl，2.7mM KCl)平衡柱子，流速為
0.5-lml/min ；
e、蛋白樣品上柱:流速為0.5ml/min,收集流出液；
f、洗柱:使用5-10 倍體積 PBS 緩衝液(4.3mM Na2HPO4,1.4mM KH2PO4,137mM NaCl,
2.7mM KCl，PH7.4)洗脫；
g、洗脫:使用2倍柱體積洗脫緩衝液(IOmMGlutathione (還原型),50mM Tris-HCl,Ph8.0)洗脫，重複2-3次，收集洗脫液；
h、GSTSefinose Resin 柱的後處理:5 倍柱體積 PBS 緩衝液(4.3mM Na2HPO4,1.4mMKH2PO4,137mM NaCl，2.7mM KC1，PH7.4);5倍柱體積去離子水洗柱；於4°C，3倍柱體積的20%乙醇中保存；1、 SDS-PAGE檢測:分別取20ul各洗脫梯度流出液，流川液，洗滌液，粗酶液加入5ul的5X SDS-PAGE上樣緩衝液(Sample loading buffer)，於100°C加熱10分鐘煮沸，上樣，進行SDS-PAGE分析，純化結果如圖9，最終獲得ZHO-1I純化蛋白。通過上述的實驗，本發明達到了如下的結果:利用本發明海藻酸裂解酶ZHO-1I的原核表達載體(PGEX-4T-1-ZM -//)轉化大腸桿菌(BL21)，可實現ZHO-1I蛋白的高水平表達，表達的ZHO-1I基本在上清中，ZHO-1I重組蛋白表達量很高，根據純化前後的蛋白總量計算，活力產量可達63.1%，因此不需要大規模培養細菌，純化ZHO-1I蛋白的操作相當簡單，成本也很低，極易重複使用。實施例6:海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的特性分析，具體內容如下:
1、酶活測定
由於海藻酸裂解酶裂解海藻酸鈉產生的不飽和糖醛酸在235nm處具有吸收值，通過測量反應液在該波長下的變化而計算相應的酶活。在反應體系(20mM磷酸鹽緩衝液(pH 7.0),0.3%海藻酸鈉)中加入IOug的海藻酸裂解酶蛋白啟動反應，IOmin後測量溶液235nm處吸光值的變化。酶活定義:在波長235nm下吸光值，以每分鐘吸光值增加I定義為一個酶活單位(U)。通過測定，純化後 的重組海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的酶活可以達到61.7U/mg,而現有海藻酸裂解酶酶活基本在20-40U/mg的範圍內，本發明所獲得的重組海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白的酶活要高於現有海藻酸裂解酶酶活的平均值。2、酶學性質的研究
(I)海藻酸裂解酶蛋白最適催化PH值測定
在PH緩衝體系(pH5.0-8.0磷酸鈉緩衝液或pH8.0-9.0 Tris-HCl緩衝液)中用海藻酸鈉為底物測定海藻酸裂解酶的最適反應PH，在37°C下反應時間為lOmin，將處於最適pH下的酶活力定義為100%，海藻酸裂解酶ZHO-1I酶的活性和穩定性與pH值的關係曲線如圖10所示，在pH5.0-8.0磷酸鈉緩衝液中，海藻酸裂解酶ZHO-1I最適酶反應pH條件為6.5，而在pH8.0-9.0 Tris-HCl緩衝液中，海藻酸裂解酶ZHO-1I的最適酶反應pH條件為8.5。(2)海藻酸裂解酶蛋白最適催化溫度和溫度穩定性測定怎麼
在pH值6.5的磷酸鹽緩衝液中用海藻酸鈉為底物測定海藻酸裂解酶的最適反應溫度，反應時間為lOmin，將處於最適溫度下的酶活力定義為100%，將酶液分別在不同溫度下保溫lOmin，結果如圖11所示，酶的最適反應溫度47°C，在42 52°C範圍內有較高的酶活力；當溫度升高到57°C時，酶活迅速下降，只有峰值的60.6 %。在pH值6.5的磷酸鹽緩衝液中用海藻酸鈉為底物測定海藻酸裂解酶的最適反應溫度，反應IOmin後,在不同溫度環境下測定酶活性損失,測定反應液的剩餘酶活力，酶的熱穩定性實驗結果如圖12所示，該酶在37°C保溫IOmin後.剩餘酶活力為89.2%;在42°C保溫IOmin後，剩餘酶活力為87.8% ;而在52°C時剩餘酶活力僅有19.3%。(3)金屬離子對海藻酸裂解酶蛋白酶活性的影響
在pH6.5的磷酸鹽緩衝液中用海藻酸鈉為底物測定不同金屬化合物(反應液中金屬離子的濃度為5mM)對海藻酸裂解酶ZHO-1蛋白活性的影響，以添加相同體積水溶液作為對照組，在最適溫度47°C下測定酶活力，將對照組的酶活力定義為100%，結果如圖13所示，Hg2+對酶活有完全抑制作用，Mn2+、Cu2+、Zn2+與Fe2+能對酶活有強烈抑制作用，Na2+對酶活有部分抑制作用，K+、Co2+、Ca2+對酶活基本無影響，而Mg2+對酶活有部分促進作用。(4)海藻酸裂解酶ZHO-1I的底物特異性實驗
將純化後的海藻酸裂解酶ZHO-1I (Iug)添加到20mM磷酸鹽緩衝液(pH 7.0)中，同時添加質量百分比0.3%的不同底物(海藻酸鈉、PloyG, PloyM)，在反應溫度為47°C下反應lOmin，結果如圖14所示，ZHO-1I對於PloyG的底物特異性較強，而對於PloyM的底物特異性較差，海藻酸裂解酶對於海藻酸鈉的底物特異性均強於PloyG與PloyM。傳統方法一般利用海藻酸鈉分解菌，通過發酵生產分離、純化得到海藻酸裂解酶，然而這種方法存在野生菌產酶量低、酶與降解產物難於分離，生產成本高等問題，成為酶解技術大量製備褐藻膠低聚糖的制約性技術難題，限制了海藻酸裂解酶的推廣使用。本發明採用基因工程技術，構建含有海藻酸裂解酶基因的工程菌株，通過誘導發酵大量生產重組型海藻酸裂解酶將解決這一制約性技術難題。與傳統方法相比，該方法使得酶的得率大大提高， 且酶的純化過程簡單高效，酶活力高於目前常見的海藻酸裂解酶。
權利要求
1.鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因其特徵在於:海藻酸裂解酶基因核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示，其編碼如SEQ ID NO:2所示胺基酸序列的蛋白質。
2.權利要求1所述鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因的原核表達載體，其特徵在於:該載體含有海藻酸裂解酶基因^% _//、Ptac啟動子和終止子、細菌核糖體結合位點RBS、GST標籤，ZHO-1I基因的上遊為Ptac啟動子，Ptac啟動子的下遊有可被IPTG誘導的操作子序列，緊靠ZHO-1I基因的起始密碼子上遊的是一個GST標籤序列。
3.權利要求2所述鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因的原核表達載體在製備海藻酸裂解酶ZHO-1I蛋白中的應 用。
全文摘要
本發明公開了一種鞘氨醇單胞菌海藻酸裂解酶基因ZH0-II及其高效表達海藻酸裂解酶ZH0-II的原核表達載體pGEX-4T-1-ZH0-II，該載體用Ptac啟動子控制它在大腸桿菌中的表達，本發明將海藻酸裂解酶基因採用大腸桿菌表達載體進行表達，能夠在較短時間內獲得表達產物海藻酸裂解酶ZH0-II，且獲得的重組海藻酸裂解酶ZH0-II具有廣泛的底物特異性，既能利用PloyG又能利用PloyM為底物，酶活可以達到61.7U/mg，本發明的原核表達載體及整體表達系統容易操作，便於工業化生產。
文檔編號C12R1/01GK103173476SQ201310132790
公開日2013年6月26日 申請日期2013年4月17日 優先權日2013年4月17日
發明者伊日布斯, 過敏, 錢龍, 趙琳, 唐麗薇, 嚴金平 申請人:昆明理工大學