一種次級淋巴趨化因子slc的製備方法
2023-05-18 18:17:46
專利名稱:一種次級淋巴趨化因子slc的製備方法
技術領域:
本發明涉及醫藥生物工程技術領域,是人次級淋巴趨化因子SLC的一種新的製備方法。
背景技術:
趨化因子是由一類結構上相關、功能上不同的小分子細胞因子(8-12KDa)組成的家族。它們在多種組織細胞和白細胞內表達。趨化因子在機體生理和病理狀況下,都起著重要的作用。在炎症、腫瘤、自身免疫病、血管生成、變態反應、幹細胞的分化、次級淋巴器官的發育、AIDS等病毒感染中均有趨化因子及受體的參與。至今已發現近50種趨化因子。絕大多數趨化因子的一級結構中有4個保守的半胱氨酸,根據半胱氨酸的數目和相對位置,按系統命名法將趨化因子分為四大亞家族CXC趨化因子,其前兩個半胱氨酸之間有一個其它的胺基酸相隔;CC趨化因子,前兩個半胱氨酸相鄰;C趨化因子,只有第二和第四位的兩個半胱氨酸;CX3C趨化因子,前兩個半胱氨酸被其它3個胺基酸隔開。有的亞家族若有多種趨化因子,則再根據被發現的先後進行編排。
最近發現一種次級淋巴趨化因子SLC(Secondary Lymphiod tissure Chemokine)也稱CCL21,其由111個胺基酸組成,胺基酸序列從N端至C端為SDGGAQDCCLKYSQRKIPAKVVRSYRKQEPSLGCSTPATLFLPRKRSQAELCADRKELWVQQLMQHLDKTPSPQKPA QGCRKDRGASKTGKKGKCSK GCKRTERSQTPKGP。它是一種特殊的趨化因子,除了具有4個保守的半胱氨酸外,C末端還有2個半胱氨酸,研究證明,該趨化因子對新分離的和培養的T淋巴細胞以及成熟的樹突狀細胞有很強的趨化作用,還能指導髓祖先細胞的動員(Murphy P等人Pharmacological Reviews.2000,52(1)145-176)。製備方法國外有報導利用昆蟲細胞表達SLC(NagiraM等人The Journal Of BiologicalChemistry 1997.272,19518-19524),他們將重組SLC注射到小鼠肺腫瘤實體內,有40%的腫瘤消失,顯示出SLC潛在的治療腫瘤效果,但是用昆蟲細胞表達的成本高,細胞培養繁鎖;國內已有單位用大腸桿菌表達SLC(王東寧等人生物工程學報2001 17(4)392-395)。而用大腸桿菌表達的產物,不易純化。
發明內容
本發明提供一種成本低廉、操作方便的次級淋巴趨化因子SLC的製備方法。所選用的表達系統為畢赤酵母,畢赤酵母表達系統容易操作,成本低,安全性高,能高密度發酵,產物易純化。
製備方法包括如下步驟一、構建SLC重組表達質粒PPIC9K/SLC1、合成引物正向引物為5′GGCTCGAGAAAAGAAGTGGAGGGGCTCAG3′反向引物為5′CCGAATTCCTATGGCCCTTTAGGGGTC3′上述引物的5′端分別引入XnoI和ECoRI酶切位點(橫線所示);2、將上述引物以人肺cDNA庫為模板進行PCR擴增,得DNA片段,其中有含XhoI和EcoRI酶切位點的SLC DNA片段;3、將所得DNA片段和酵母載體PPIC9分別用XhoI和ECoRI酶切後,用T4DNA連接酶連接,經轉化和酶切及測序其重組質粒,獲得正確序列的SLC重組質粒PPIC9/SLC,再用BamHI/EcoRI酶切下0.6Kb片段,插入到載體PPIC9K的相應酶切位點,獲得重組表達質粒PPIC9K/SLC。
二、構建表達SLC的畢赤酵母工程菌GS115/PPIC9K/SLC將上述重組表達質粒PPIC9K/SLC用BgI II限制性內切酶進行線性化處理,並用電穿孔轉化畢赤酵母受體細胞GS115,經G418(新黴素相關氨基糖苷類抗生素)抗藥篩選,獲得工程菌GS115/PPIC9K/SLC。
三、製備SLC將酵母工程菌GS115/PPIC9K/SLC用BMGY培養基培養,再用BMM誘導培養基培養,離心後分別取上清液以及由上清液上柱純化得到的SLC洗脫液兩種樣品液進行除鹽,再分別測定活性,結果表明,發酵上清液及純化的SLC對從外周血分離到的T淋巴細胞均顯示出明顯趨化活性。
圖1重組表達質粒PPIC9K/SLC的構建流程圖
具體實施例方式本發明所用的載體PPIC9和PPIC9K購自Invitrogen公司,所用大腸桿菌宿主菌株TOP10和畢赤酵母宿主菌GS115也購自Invitrogen公司。具體操作步驟如下一、構建SLC重組表達質粒PPIC9K/SLC(見圖1)1、合成引物
為了從人肺cDNA庫中分離到次級淋巴趨化因子SLC基因片段,根據表達載體PPIC9K的克隆位點和SLC基因的結構設計一對引物,其正向引物和反向引物的5′端分別引進XhoI和ECoRI酶切位點(CTCGAG和GAATTC),正向引物為5′GGCTCGAGAAAAGAAGTGGAGGGGCTCAG3′,反向引物為5′CCGAATTCCTATGGCCCTTTAGGGGTC3′。
2、PCR擴增以人肺cDNA庫為模板進行PCR擴增,其循環擴增的條件為94℃4分鐘;94℃45秒,58℃45秒,72℃2分鐘,30個循環;72℃10分鐘。擴增後的產物,經1%Agarose凝膠電泳分離純化。
3、構建重組質粒PPIC9K/SLC(詳見分子克隆分冊第二版)按常規將純化的PCR產物和載體PPIC9分別用XhoI/ECoRI進行雙酶切和純化,再用T4DNA連接酶進行連接,其連接反應後的混合液以CaCl2法轉化大腸桿菌TOP10。其轉化子的質粒DNA經XhoI/ECoRI酶切初步鑑定後,用AOXI的序列分析引物5′GACTGGTTCCAATTGACAAGC3′進行核苷酸序列分析,獲得SLC基因序列正確的重組載體轉化子TOP10/PPIC9/SLC。由於表達載體PPIC9K含2個XhoI酶切位點,所以用BamHI/ECoRI分別對載體PPIC9K和PPIC9/SLC進行雙酶切,分別用1%Agaose凝膠電泳分離及純化。再將純化的PPIC9K大片段與PPIC9/SLC的小片段用T4DNA連接酶連接,以CaCl2法轉化大腸桿菌TOP10,經酶切鑑定,獲得的陽性重組子為含重組質粒PPIC9K/SLC的大腸桿菌。
二、構建表達SLC的畢赤酵母工程菌GS115/PPIC9K/SLC(詳見Invitrogtn的畢赤酵母表達操作手冊)取少量重組大腸桿菌(含PPIC9K/SLC質粒)種於3mlLB(含100μg/ml氨苄青黴素)培養基中,37℃培養過夜,以1%的接種量種於50mlLB(含100μg/ml氨苄青黴素)中,37℃培養14小時,按鹼法提取質粒DNA。該質粒DNA用BglII限制性內切酶進行線性化,用兩倍體積的乙醇沉澱DNA,離心後將線性化重組表達載體PPIC9K/SLC的DNA溶於無菌水中,最終濃度為0.4mg/μl,以電穿孔法轉化畢赤酵母菌GS115。GS115感受態細胞的製備如下取GS115單菌落種於5mlYEPD(酵母提取物1%,蛋白腖2%,葡萄糖2%)培養基中,28-30℃振蕩培養過夜,取15μl過夜培養物轉種於40mlYEPD中,繼續培養至OD600約1.3-1.6,離心(5000轉/分)收集菌體,分別用預冷的無菌水和1mol/L山梨醇各洗一次,用預冷的1mol/L山梨醇將菌體懸浮成200μl,取80μl菌體懸浮液與4μg/10μl線性化載體PPIC9K/SLC的DNA混勻,轉入預冷的0.2cm電擊杯(BioRad公司)中,在電擊儀上,設定電壓為1300V,電容為25μF,電阻為200Ω,進行電穿孔轉化,電轉化後,立即於電擊杯中加入0.9ml預冷的1mol/L山梨醇,取出全部的細胞液,塗於4塊MD平板上[1.34%YNB,(4×10-5)%生物素,2%葡萄糖,1mol/L山梨醇,2%瓊脂],置於28-30℃培養至長出菌落。
由於PPIC9K/SLC重組載體含有細菌卡那黴素基因,線性化的SLC表達單元中仍含有卡那黴素基因,當它轉入酵母細胞後,能使酵母細胞對G418產生抗性,而對G418抗性程度大致取決於卡那黴素基因的整合數,因此可以通過不同濃度的G418來篩選多拷貝的轉化子。將轉化子用無菌牙籤點於含G418的YEPD平板,最終在G418濃度為1.5mg/ml平板上獲得10個GS115/PPIC9K/SLC克隆。三、SLC在畢赤酵母中的表達和純化及活性的測定1、SLC在畢赤酵母中的分泌表達分別取少量上述10個重組酵母轉化子和含空載體PPIC9K的GS115對照菌株種於50mlBMGY[1%酵母抽提物,2%蛋白腖,1.34%YNB,1%甘油,100mmol/L,PH6.0磷酸鉀緩衝液,(4×10-5%)生物素]培養基中,28℃振蕩培養至OD600約2-6,離心收集菌體,轉入20ml BMM[1%酵母抽提物,2%蛋白腖,1.34%TNB,0.5%甲醇,100mmol/LPH6.0磷酸鉀緩衝液,(4×10-5%)生物素]誘導培養基中,28-30℃振蕩培養3天,離心取上清經SDS-PAGE凝膠電泳,考馬斯亮蘭染色,10個SLC重組酵母轉化子都顯示一條深色的約12KD的蛋白帶,而對照菌株沒有這條帶,該蛋白帶就是重組SLC,說明這種畢赤酵母工程菌能高水平分泌表達SLC。
2、分離純化選上述10個克隆中表達SLC最好(電泳條帶顯色最深)的GS115/PPIC9K/SLC工程菌用同樣的方法進行發酵培養,將發酵液離心後取上清液,先對5mM Tris-Hcl PH8.0緩衝液進行透析,透析後的樣品以20mM Tris-Hcl PH8.0平衡的CM柱進行層析,用20mMTris-Hcl PH8.0+150mMNacl洗脫液進行洗脫,收集其洗脫峰,再經分子篩Superdex75柱分離,以20mM PBS PH8.0+150mMNacl洗脫,收集洗脫峰的蛋白樣品液。經SDS-PAGE凝膠電泳,考馬斯亮蘭染色,只見一條SLC的蛋白帶,表明SLC被純化。
3、SLC趨化活性的測定取枸櫞酸鈉抗凝的人外周血3ml,用Hanks液稀釋至5ml,然後將它緩慢加到有3ml淋巴分離液的離心管中,2000轉/分離心20分鐘,收集單個核細胞層的細胞,以Hanks液洗滌一次,用RPM1640培養基懸浮細胞,計數細胞濃度。取24孔細胞培養板,往孔內加500μl趨化樣品液,該樣品液為上述工程菌發酵後,離心所得上清液經G25膠除鹽,0.22μm膜過濾除菌處理所得,將Bodyman小室(美國BD公司)架於孔內,然後往小室內加入分離的單個核細胞30000個/200μl,將細胞置於37℃保溫4小時,收集培養板孔內的細胞,用細胞計數儀計算孔內的細胞數。同時將含空載體PPIC9K的GS115酵母菌發酵液的上清液,用同樣的方法處理,作為陰性對照。結果顯示該畢赤酵母工程菌發酵上清液中含有SLC,其對新分離外周血的淋巴細胞有明顯的趨化作用,趨化細胞數是陰性對照的5倍。發酵上清液經透析和柱層析純化後所得的SLC蛋白峰洗脫液採用同樣的方法測定SLC趨化活性,以PBS緩衝液為陰性對照。結果表明,純化的SLC蛋白樣品液對外周血分離的淋巴細胞有明顯的趨化活性,趨化細胞數量為陰性對照的5倍,說明本純化方法是切實可行的。本發明製備方法簡便,表達水平高,容易純化,成本低廉。
權利要求
1.一種次級淋巴趨化因子SLC的製備方法,包括構建SLC重組表達質粒、構建表達SLC的工程菌及工程菌表達SLC產物的純化,其特徵在於SLC的表達系統為畢赤酵母工程菌。
2.按權利要求1所述的次級淋巴趨化因子SLC的製備方法,其特徵在於構建的SLC重組表達質粒為PPIC9K/SLC。
3.按權利要求2所述的次級淋巴趨化因子SLC的製備方法,其特徵在於工程菌表達SLC產物純化採用CM陽離子交換柱及Superdex-75分子篩。
4.按權利要求1、2、3所述的次級淋巴趨化因子SLC的製備方法,其特徵在於所用的畢赤酵母菌為GS115細胞株,構建的表達SLC的畢赤酵母工程菌為GS115/PPIC9K/SLC。
5.權利要求1、2、3所述次級淋巴趨化因子SLC製備方法所製備的SLC用於製備抗腫瘤藥物的用途。
6.權利要求4所述次級淋巴趨化因子SLC製備方法所製備的SLC用於製備抗腫瘤藥物的用途。
全文摘要
本發明涉及醫藥生物工程技術領域,是人次級淋巴趨化因子SLC的一種新的製備方法。本發明選用的表達系統為畢赤酵母表達系統,包括如下步驟:(1)合成正、反向引物,以人肺cDNA為模板進行PCR擴增,構建SLC重組表達質粒
文檔編號C12P21/02GK1422959SQ0215123
公開日2003年6月11日 申請日期2002年12月12日 優先權日2002年12月12日
發明者武聖明, 高卜渝, 袁漢英 申請人:武聖明, 高卜渝, 袁漢英