用新的色譜分離條件純化α-1蛋白酶抑制劑的製作方法

2023-05-29 07:57:56 2

專利名稱：用新的色譜分離條件純化α-1蛋白酶抑制劑的製作方法
一般來講，本發明涉及蛋白質的純化方法，具體來講，本發明涉及用陽離子交換在能使活性α-1 PI不與柱結合而汙染蛋白質與柱結合的條件下純化得自血漿部分的α-1蛋白酶抑制劑。
α-1蛋白酶抑制劑(α-1 PI)是分子量為約55000道爾頓的糖蛋白。α-1 PI是蛋白酶例如胰蛋白酶、胰凝乳蛋白酶、胰彈性蛋白酶、皮膚膠原酶、血管緊張肽原酶、尿激酶和多形核淋巴細胞的蛋白酶的抑制劑。α-1 PI的現行治療用途是抑制肺中的淋巴細胞彈性蛋白酶。該蛋白酶通過分解異種蛋白起作用。當α-1 PI存在的量不足以調節彈性蛋白酶的活性時，該彈性蛋白酶會破壞肺組織。此不平衡經過一定時間後會導致慢性肺組織損害和肺氣腫。補給α-1 PI已成功地用於治療這種肺氣腫。
目前對α-1 PI的需求量超過了供給量。已將α-1 PI基團轉移並在微生物、細胞株和綿羊中表達。但尚未製得令人滿意的重組體產品。人血漿是治療用α-1 PI的唯一被認可的來源。α-1 PI用於代替治療並以正常基準長期給予病人。由於微量雜質能刺激病人的免疫反應，因此該產品的高純度對成功的治療是個關鍵。血漿-α-1 PI源是有限的，因此α-1 PI高收率的純化方法是必要的。至今尚無可用的能獲得高收率和高純度的α-1 PI的實用的方法。
現已發表了多種由人血漿中提純α-1 PI的方法。Bollen等人(美國專利4629567(1986))使用5個不同的色譜步驟從酵母、大腸桿菌和人血漿中提純α-1 PI。這5個步驟包括DEAE離子交換、硫醇-二硫化物交換、肝素親和、鋒螯合色譜和氨基己基離子交換。未給出純度和收率的數據。
Novika等人，Gematol.Transfuziol.3446-50(1989)報導了製備血液製品和副產物的分離方法。他們採用了親和、DEAE纖維素和凝膠過濾色譜。未給出純度和收率數據。
Podiarene等人，Vopr.Med.Khim.3569-99(1989)報導了用親和層析以單克隆抗體，從人血漿中分離α-1 PI的一步法。α-1 PI活性增加61.1倍，收率為20％。
Burnouf等人，Vox.Sang.52，291-297(1987)以血漿上清液A(相當於Cohn部分II＋III)為原料，使用DEAE色譜法和篩析色譜法製備α-1 PI，其純度為80-90％(以SDS-PAGE)，純度增大36倍。由上清液A的回收率為65-70％。
Hein等人，Eur.Respir.J.916s-20s(1990)提出了這樣一個方法用Cohn部分IV-作原料，採取用聚乙二醇分級沉澱，隨後在DEAE Sepharose上進行陰離子交換色譜。終產品的純度為約60％，收率為45％。
Dubin等人，Prep.Biochem.2063-70(1990)提出了兩步色譜純化法。先將α-1 PI、CI抑制劑、α-1抗胰凝乳蛋白酶和內α-1胰蛋白酶抑制劑(inter α-1 trypsin inhibitor)從Blue Sepharose中洗脫出來，然後將α-1 PI用凝膠過濾法純化。未給出純度和收率的數據。
Ballieux等人採用4-苯基丁胺新和層析、陽離子交換和最後的免疫親和步驟從化膿性痰中提純α-1 PI和蛋白酶3-複合體(Ballieux，B.E.等人，J.Immunol.Methods 15963-70(1993)，在所用的條件下，大多數痰蛋白質與樹脂結合，而α-1 PI和蛋白酶-3能不結合通過。
Jordan等人，美國專利第4748783(1988)描述了在病毒滅活步驟後用親和層析除去製劑中的無生物活性的蛋白質的方法。蛋白質的天然形式和變性形式之間進行分離的基礎是天然蛋白質對親和性樹脂的生物活性，而不是天然的和變性的蛋白質之間的物理差異。
這些方法均未使用以強陽離子樹脂在低pH低鹽濃度和適中的蛋白質濃度下的流過色譜作純化步驟。出乎意料的是，在例如這些條件下，僅活性α-1 PI流過柱子。該方法從色譜柱的回收率可達到90％，在使用兩去陽離子交換柱後純度可達約95％。本發明提供以高純度和高收率大規模地從人血漿中提純α-1 PI的改進的方法。
「活性α-1 PI」或「天然的α-1 PI」是指在體外彈性蛋白酶測定中能顯示抑制彈性蛋白酶活性的α-1 PI。
「非活性α-1 PI」或「變性的α-1 PI」是指在體外彈性蛋白酶評定中對彈性蛋白酶和活性無影響的α-1 PI。
「高度純化的」指含20％以下的汙染蛋白質。
「基本上不含非活性α-1 PI」指非活性α-1 PI和含量低於10％。
「基本上不含非活性病毒」指由於已經認可的病毒滅活步驟處理(例如巴氏滅菌或化學處理)活性病毒的含量降低。一般來講這是指模型病毒的效價降低至少約4logs。
所有的電導率測定均在25℃進行。
本發明是由含蛋白質水溶液中提純α-1 PI的方法，即在足以能確保活性α-1 PI不與介質(或離子交換樹脂)結合的pH、離子強度和蛋白質濃度的條件下，在陽離子交換色譜介質上進行流通色譜。在優選的實施方案中，該方法包括以下步驟(1)將蛋白質溶液滲析或透析濾過至離子強度為約≤10mmho/cm；(2)將溶液pH調至約≤6.0；(3)將蛋白質溶液調至約≤10mg蛋白質/ml；(4)使溶液通過陽離子交換色譜樹脂；和(5)收集色譜的流過部分作為純化的α-1 PI。


圖1是說明一般用於提純按照本發明的α-1 PI的Cohn分級分離法、得自這些流分的蛋白質和兩個原料(Cohn組分IV-1和Cohn流出液II和III)的流程圖。
圖2是顯示我們的α-1 PI純化方法的優選的步驟的流程圖。
圖3是說明與在先技術相比本申請中所述的方法在純度和比活性方面的改進的棒狀圖。
本發明是由人血漿中提純α-1 PI的改進的方法。本方法涉及在pH≤6.0下在低離子強度緩衝液中進行陽離子交換色譜。收集流過部分，該部分含純化和α-1 PI。該陽離子交換色譜對α-1 PI是特異性的，實際上可用作直接由Cohn組分IV-1懸浮液的兩步提純法一個陽離子交換柱接著第二隻陽離子交換柱。
該方法是通用的，陽離子色譜足以能處理包括Cohn組分流出液II＋III、Cohn組分IV-1糊狀物(目前鋮選的原料)和純化的α-1 PI在內的各種原料，並仍能製備基本上純的產品。
作為大規模製備藥用產品的可供選擇的方案，可以增加多個附加步驟包括病毒的滅活以使收率最佳化、增進病毒的安全性並保證調節的一致性。這些步驟可以包括以下步驟，但不限於這些(1)在弱離子交換樹脂(DEAE)上進行初色譜；(2)在強陰離交換樹脂(QAE)上進行初色譜；(3)用乾熱法或巴氏滅菌法將溶液中的病毒滅活；(4)將病毒排阻過濾以除去可能的病毒汙染物；(5)化學處理例如溶劑淨化處理以將病毒滅活；和(6)沉澱步驟以在陽離子色譜前部分純化原料。
pH通過改變蛋白質上的帶電基團而在離子交換色譜中起關鍵作用。它能改變蛋白質與色譜樹脂的結合行為，或者由未結合的轉變成結合的，或者與此相反。優選用在本發明中的強陽離子樹脂配體是與樹脂珠直接或通過短碳基鏈相連的磺酸根(-SO3-)。該配體在1-14的pH範圍內帶有負電荷。若在給定的pH下蛋白質的淨有效表面電荷是負的，則該蛋白質將無阻滯地流過該柱。一般來講，若該溶液的pH在其pI以上，則該蛋白質具有負電荷。
在人血漿中的兩個很特別的蛋白質是α-1 PI和白蛋白，其平均pI分別為4.8和5.3。這兩種蛋白質在pH5.45均應帶負電並應流過陽離子交換柱。出人意料的是，這些實驗顯示，在低鹽濃度和pH5.45的條件下，白蛋白和變性的(或無活性的)α-1PI與該樹脂結合，而僅天然的(或活性的)α-1 PI流過該柱。對α-1 PI的這一觀察結果提示在離子交換中，不僅蛋白質的pI而且其三級結構也是重要的。α-1PI的天然形式顯然具有負性電荷表面，而變性形式的表面可能帶有更多正電荷。因此，變性蛋白質意外地與陽離子樹脂相結合。α-1 PI的天然形式在較高pH下要穩定得多。若考慮α-1 PI的穩定性和用離子交換色譜純化α-1 PI，則pH5.45是實用的最低pH值。
離子交換樹脂和蛋白質溶液之間的平衡受該溶液的離子強度、蛋白質濃度、pH和該樹脂上的特定配體所影響。Yamamoto等人在Biote-chonl.Bioeng.251373-1391(1983)中提出了關於作為在低蛋白質濃度溶液的離子強度的函數的分布係數的半經驗公式。該公式為K＝A(I)B＋Kcrt式中K代表分布係數，A和B代表經驗常數，I代表溶液的離子強度，Kcrt代表在靜電相互作用可被忽略的高離子強度下蛋白質的分布係數。在給定的離子強度下不同的蛋白質的分布係數不同。因此，不同的蛋白質在相同的條件下以不同的速度遷移。這適用於用該色譜法進行蛋白質的分離。在低鹽濃度下，多數蛋白質的遷移速度由於在進樣步驟中與樹脂結合而減慢，天然的α-1 PI由於其獨特的表面電荷性質通過該柱。若流過緩衝液的離子強度增大，則其它蛋白質與樹脂的相互作用被改變，較大百分比例的蛋白質會流過該柱。因此，增加該溶液的離子強度會降低流過該柱的α-1 PI的純度。
鹽濃度能能過陽離子例如Na+與樹脂上的氫離子進行可逆性交換而改變流出液的pH。增加鹽濃度能使更多的H+從樹脂轉移至流出液中，從而導致洗脫液pH降低。因此，當初始蛋白質溶液用平衡緩衝液超濾時，進樣溶液的離子強度應等於或略高於平衡緩衝液的離子強度。於是pH在進樣過程中應保持相同或僅略微降低，若在進樣後將平衡緩衝液用作洗滌劑，則它可由於降低了離子強度而導致pH增大。因此，在該洗滌劑中可使用略高的離子強度緩衝劑以保持該pH。
如前所述，高蛋白質濃度也能影響蛋白質與樹脂的結合平衡。當蛋白質濃度增高時，吸附等溫線通表常表現出飽和曲線(Yamamoto等人，「Ion Exchange Chromatography of Proteins」，1988，Chromat-ograpHic Science Serise)。因此，當接近結合的飽和水平時，結合的雜質的實際量達最大。在達到最大後，通過該柱的雜質的相對百分數在樣品的蛋白質濃度增加時會增大。因此，蛋白質濃度在低至足以在雜質的吸附曲線的線性範圍內時最佳。
由於蛋白質往往能緩衝溶液的pH，因此蛋白質濃度還能影響流出液的pH。當將蛋白質通過與色譜介質結合從溶液中選擇性去除時，該溶液的實際緩衝作用(即pH)被改變。對色譜法的影響是複雜的，因為pH變化將取決於被吸附到該柱上的蛋白質的相對百分數。吸附受柱的流通量、溶液的緩衝能力、蛋白質混合物的改變的性質和各種蛋白質的競爭性結合的影響。
我們的實驗表明，在給陽離子交換柱進樣時，用較高的蛋白質濃度給該陽離子交換柱進樣，能導致流出液的pH逐漸增大。pH升高會導致α-1 PI的純度降低。為使大規模純化用的陽離子交換柱的載荷最大，可在雜質曲線和pH影響的可接受的範圍內使用較高的濃度，儘管一般來講較稀的蛋白質溶液是α-1 PI純化色譜的較好的原料。
實施例1優選的實施方案在本發明的優選的實施方案中，用陰離子交換色譜從在加至強陽離子交換柱之前的Cohn組分IV-1(Fr.IV-1)懸浮液中部分提純α-1 PI。根據比活性。Cohn組分IV-1懸浮液為約10％α-1 PI。IV-1懸浮液象其它血漿組分一樣，含多種蛋白質脂蛋白、免疫球蛋白、球蛋白、變性蛋白等。脂蛋白存在一個特殊問題。若它們與色譜樹脂結合，則它們難以去除並能堵塞樹脂孔，使整個樹脂床的壓力增大。而且，由於蛋白質殘餘累積在樹脂上，結合能力喪失。為從Fr.IV-1懸浮液中除去脂蛋白和其它雜質，第一步採用DEAE離子交換色譜，而不用強陽離子色譜。DEAE荷載條件應為能使大部分脂蛋白通過該柱而不結合。DEAE離子交換色譜的α-1 PI洗脫條件基於獲取α-1 PI的95-100％回收率來選擇。
將IV-1懸浮液的電導率調至≥5mmho/cm，pH調至8.0。然後將該蛋白質溶液加在DEAE樹脂上。用20mM磷酸氫二鈉和95mM氯化鈉在pH8.0洗脫α-1 PI。將DEAE流出液用20mM磷酸二氫鈉和5mM氯化鈉在pH6.5進行透析濾過。將經透析濾過的洗脫液調至pH5.45，然後將其加至強陽離子樹脂上，α-1 PI流過該柱。將流出液調至pH7.0，並加入0.15M氯化鈉。
若期望，可在此時將α-1 PI冷凍。對於病毒的滅活，將α-1 PI溶液融化，若有必要，在60mM組氨酸和5mM氯化鈣中調至pH6.5，然後凍幹，然後將凍乾物於80℃加熱72小時以將病毒滅活。然後將凍乾物溶於淨化水中，並加入37％(W/V)蔗糖和0.38M檸檬酸鹽作穩定劑。加入0.3％磷酸三正丁酯(TNBP)和0.2％膽酸鈉作為處理包膜病毒(enveloped viruses)的溶劑洗滌劑。於30℃培養3小時後，用透析濾過法除去TNBP和膽酸鹽。
將已經病毒滅活處理的溶液用20mM磷酸二氫鈉和5mM氯化鈉在pH6.5進行透析濾過。將經透析濾過的溶液調至pH5.45，並加至第二強陽離子樹脂中以除去任何剩餘的汙染物和由於病毒滅活步驟變性的α-1 PI。α-1 PI的天然形式流過該柱。將收集的流出液調至pH17.0，加入0.15M氯化鈉，並使其通過0.15μM濾器作為補充的病毒滅活步驟。製得高純度的基本上不含其它蛋白質的α-1 PI(≥95％)。DEAE色譜能除去脂蛋白，將α-1 PI的純度增至20％。第一陽離子柱能製得約60-70％純度的α-1 PI，同時回收率為約90％。第二陽離子柱能使終產品的純度達到95％。將陽離子交換柱用1MNacl和1MNaOH洗滌以除去結合的蛋白質。將與兩個陽離子交換柱結合的蛋白質依次用1M氯化鈉和1M氯化鈉和1M氫氧化鈉除去。
實施例2在本實施例中Cohn組分II＋III流出液是原料。將其用20mM磷酸二氫鈉和5mM氯化鈉在pH6.5和5℃進行透析濾過以除去醇並降低離子強度。然後將該溶液調至pH5.45並加至預平衡的強陽離子交換柱中。收集流出液作為顯著富集的α-1 PI部分。在該原料中的汙染蛋白質被滯留在陽離子交換柱中。
在一次通過陽離子交換柱後。α-1 PI被純化至基本上不含Cohn組分流出液II＋III中的其它蛋白質。該流出液的純度據DSD-PAGE為82％α-1 PI。比活性增大20倍，由每毫克總蛋白質0.03mg彈性蛋白酶抑制活性增至每毫克蛋白質0.59mg彈性蛋白酶抑制活性。
實施例3本實施例使用部分純化的可商購的α-1 PI(Prolastin，Miles，Inc.)作原料。將Prolastin用0.1MNaCl和0.02M磷酸鈉在pH7.0緩衝。α-1 PI的濃度約為30mg/ml，蛋白質濃度為約60ml/ml。白蛋白通常為總蛋白質的1％。IgA的含量通常為約1mg/ml(總蛋白質的2.5％)。將Prolastin用5mMNaCl和20Mm磷酸二氫鈉透析濾過的降低離子強度。將溶液的pH降至5.45，蛋白質濃度降至5.3mg/ml，並使該溶液流過強陽離子交換柱。收集流出液作為純化的α-1 PI在SDS-PAGE上僅顯示出單體和二聚體α-1 PI，蛋白質分別為95.4％和4.6％。然後使該溶液於pH7.0在0.15MNaCl中穩定，並可被過濾或濃縮並凍幹，得到最終的穩定的產品。
將結合的蛋白質流分洗脫，並在SDS-PAGE上進行電泳。用Coomassie Blue顯色的蛋白質的44％是在α-1 PI的分子量範圍內。該部分的彈性蛋白酶抑制作用測定表明無α-1 PI活性。這表明該帶中的蛋白質是失活的α-1 PI。
對上述實施例的總結見下表。
實驗數據總結
也成功地用於實驗室規模..由Coomassie Blue可染色的蛋白質測得的純度百分數，並經Western Blot鑑定為單體和二聚體的混合物。…總收率透析濾過後給出。透析濾過後觀察到α-1 PI活性增強。
以上描述了本發明，我們認為，蛋白質純化領域的技術人員會對其做出變動。因此，以上實施例應僅被認為是對本發明的舉例說明，本發明的範圍應僅受附權利要求的限制。
權利要求
1.在含有α-1蛋白酶抑制劑和其它蛋白質的水溶液中提純α-1蛋白酶抑制劑的方法，它包括以下步驟(A)調節該水溶液的pH、離子強度和蛋白質濃度以使得活性α-1蛋白酶抑制劑不能與離子交換樹脂結合，而溶液中的其它蛋白質能與離子交換樹脂結合；和(B)使該溶液流過該離子交換樹脂並收集流出液中的α-1蛋白酶抑制劑。
2.權利要求1的方法，其中，在步驟(A)中的水溶液的pH不超過約6.0。
3.權利要求1的方法，其中，水溶液的離子強度不超過約10mmho/cm。
4.權利要求1的方法，其中，水溶液的蛋白質濃度不超過約10g/ml。
5.權利要求1的方法，其中所述步驟被實施一次以上。
6.權利要求5的方法，其中，在純化步驟之間對該溶液實施病毒滅活步驟。
7.權利要求6的方法，其中，其中病毒滅活步驟包括將α-1蛋白質酶抑制劑在不低於約60℃加熱不少於約10小時。
8.權利要求6的方法，其中所述的病毒滅活步驟包括加入化學試劑。
9.權利要求8的方法，其中所述的病毒滅活步驟包括向溶液中加入磷酸三正丁酯和洗滌劑。
10.高純度的α-1蛋白酶抑制劑的製劑，它包括含活性α-1蛋白酶抑制劑基本上不含活性病毒和無活性α-1蛋白質酶抑制劑並且活性為每mg總蛋白質至少約0.9mg彈性蛋白酶抑制活性。
11.權利要求10的製劑，其中α-1蛋白酶抑制劑的純度大於90％。
12.在藥學上可接受的載體中的權利要求10的產品。
全文摘要
本發明涉及用在pH低於6.0和低離子強度下溶液的陽離子色譜從生物流體包括血漿和血漿組分中提純人α-1蛋白酶抑制劑(α-1PI)的方法。陽離子色譜的優點在於在這些條件下活性α-1PI不與該陽離子柱結合而其它蛋白質包括變性的α-1PI和白蛋白與該陽離子柱結合。結果，活性α-1PI流過該色譜柱。而汙染蛋白質留在柱上。α-1PI的回收率高，且純度的提高是驚人的。
文檔編號C07K14/81GK1125231SQ95108778
公開日1996年6月26日 申請日期1995年8月23日 優先權日1994年8月24日
發明者W·R·利賓, S·X·陳 申請人:美國拜爾公司