對大腸桿菌o130型的o－抗原特異的核苷酸的製作方法

2023-08-03 12:29:01

專利名稱:對大腸桿菌o130型的o－抗原特異的核苷酸的製作方法
技術領域：
本發明涉及大腸桿菌O130型(Escherichia coli O130)中控制O-抗原合成的基因簇的核苷酸全序列，特別是涉及大腸桿菌O130型中控制O-抗原合成的基因簇中的寡核苷酸，可利用這些對O-抗原特異的寡核苷酸快速、準確地檢測人體及環境中的大腸桿菌O130型並鑑定這些致病菌中的O-抗原。
背景技術：
O-抗原是革蘭氏陰性細菌脂多糖中的O特異性多糖成分，它由許多重複的寡糖單位組成。O-抗原的合成過程研究得較清楚先由糖基轉移酶將核苷二磷酸單糖轉移到一個固定在細胞內膜的脂分子上，然後在內膜的內側合成寡糖單位，O-抗原的寡糖單位再通過轉運酶被轉移到內膜外側，而後通過聚合酶聚合成多糖，再被連接到一個糖脂分子上形成脂多糖分子[Whitfield，C.(1995)「Biosynthesis of lipopolysaccharide O antigens」.Trends inMicrobiology.3178-185；Schnaitman，C.A.and J.D.Klena.(1993)「Genetics oflipopolysaccharide biosynthesis in entericbacteria」.MicrobiologicalReviews，57(3)655-682]。編碼負責O-抗原合成的所有酶分子的基因一般在染色體上相鄰排列，形成一個基因簇[Reeves，P.R.，et al.(1996)「Bacterialpolysaccharide synthesis and gene nomenclature」Trends in Microbiology，4495-503]。在志賀氏菌、大腸桿菌和沙門氏菌中，O-抗原基因簇位於galF和gnd基因之間[Lei Wang.et al(2001)「Sequence analysis of four Shigella boydii O-antigenlociimplication for Escherichia coli and Shigella relationships」.Infection andImmunity，116923-6930；Lei Wang and Peter Reeves(2000)「The Escherichia coliO111 and Salmonella enterica O35 gene clustersgene clusters encoding the samecolitose-containing O antigen are highly conserved」.Journal ofBacteriology.1825256-5261]。O-抗原基因簇含有三類基因糖合成路徑基因，糖基轉移酶基因，寡糖單位處理基因，其中糖合成路徑基因編碼的酶合成O-抗原所需的核苷二磷酸單糖；糖基轉移酶基因編碼的酶將核苷二磷酸單糖及其它分子轉到單糖上從而使單糖聚合成寡糖單位；寡糖單位處理基因包括轉運酶基因和聚合酶基因，它們將寡糖單位轉移到細菌內膜外側，再聚合成多糖。糖基轉移酶基因和寡糖單位處理基因只存在於攜帶這些基因的基因簇裡。O-抗原中單糖的不同，單糖間聯結鍵的不同和寡糖單位之間聯結鍵的不同構成了O-抗原的多樣性，而單糖的組成、單糖間的聯結鍵及寡糖單位之間的聯結鍵是由O-抗原基因簇中的基因控制著，所以O-抗原基因簇決定了O-抗原的合成，也決定了O-抗原的多樣性。
因為O-抗原是極強的抗原，是大腸桿菌重要的致病因素之一，同時它又具有極強的多樣性，這啟示我們能研究一種快速、準確地檢測大腸桿菌及其O-抗原的特異性好、靈敏度高的方法。以表面多糖為目標的血清學免疫反應自上世紀30年代以來一直被用於對細菌的分型和鑑定，是鑑定致病菌的唯一的手段。這種診斷方法需要大量的抗血清，而抗血清一般種類不全，數量不足，大量的抗血清在製備和儲存中也存在一些困難。另一方面此法耗時長、靈敏度低、漏檢率高、準確性差，所以，現在普遍認為這種傳統的血清學檢測方法將為現代分子生物學方法取代。1993年，Luk，J.M.C et.al用沙門氏菌(S.enterica)O-抗原基因簇的特異核苷酸序列通過PCR方法鑑定了沙門氏菌的O-抗原[Luk，J.M.C.et.al.(1993)「Selective amplification of abequose andparatose synthase genes(rfb)by polymerase chain reaction for identification ofS.enterica major serogroups(A，B，C2，andD)」，J.Clin.Microbiol.312118-2123]。Luk，et.al的方法是將相應於沙門氏菌血清型E1，D1，A，B和C2的O-抗原內的CDP-阿比可糖和CDP-泰威糖的合成基因的核苷酸序列排列後得到對不同血清型的沙門氏菌特異的寡核苷酸。1996年，Paton，A.W et.al用對E.coli O111的O-抗原特異的源於wbdI基因的寡核苷酸鑑定了一株產毒素的E.coli O111的血清型[「Molecular microbiological investigation of an outbreak of Hemolytic-Uremic Syndrome caused by dry fermented sausage contaminated with Shiga-liketoxin producing Escherichia coli」.J.Clin.Microbiol.341622-1627]，但是後來的研究表明Paton，A.W et.al的用源於wbdI基因的寡核苷酸鑑定E.coli O111的血清型的方法有假陽性結果出現。Bastin D.A.and Reeves，P.R.認為，這是由於wbdI基因是一個推測的糖合成路徑基因[Bastin D.A.andReeves，P.R.(1995)Sequence and analysis of the O antigen gene (rfb)cluster ofEscherichia coli O111.Gene 16417-23]，而在其它細菌的O-抗原的結構中也可能有這個糖，所以糖合成路徑基因對於O-抗原並不是高度特異的志賀氏菌有46種血清型，但只有33種不同的O-抗原，大腸桿菌有166種不同的O-抗原[Reeves，P.R(1992)「Variation in O antigens，niche specificselection and bacterial populations」.FEMS Microbiol.Lett，100509-516]，二者親緣關係非常近，並且有12種是大腸桿菌和志賀氏菌共有的[Ewing，W.M.(1986)「Edwards and Ewing’s identification ofthe Enterobacteriaceae」.Elsevier SciencePublishers，Amsterdam，The Netherlands；T.cheasty，et al.(1983)「Antigenicrelationships between the enteroinvasive Escherichia coli antigensO28ac，O112ac，O124，O136，O143，O144，O152 and and Shigella O antigens」J.clinMicrobiol，17(4)681-684]
發明內容
本發明的目的是提供了一種對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸。它是大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的核苷酸，是源於糖基轉移酶基因和轉運酶基因及聚合酶基因的特異的核苷酸。
本發明的次一目的是提供了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的全長核苷酸序列。
本發明的另一目的是提供了構成大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的基因轉運酶的基因即wzx基因或與wzx有相似功能的基因；聚合酶基因即wzy基因或與wzy有相似功能的基因；變位酶基因即glf基因或與glf有相似功能的基因；糖基轉移酶基因，包括orf5、orf6、orf7基因。
本發明的又一目的是提供了寡核苷酸，它們分別源於大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中編碼糖基轉移酶的基因包括orf5、orf6、orf7基因；源於編碼轉運酶的基因即wzx基因或與wzx有相似功能的基因；源於編碼聚合酶的基因即wzy基因或與wzy有相似功能的基因；它們是上述基因內的寡核苷酸，長度在10-20nt；它們對大腸桿菌O130型的O-抗原是特異的；尤其是表1中列出的寡核苷酸，它們對大腸桿菌O130型的O-抗原是高度特異的，而且這些寡核苷酸還可重新組合，組合後的寡核苷酸對大腸桿菌O130型的O-抗原也是高度特異的。
本發明的再一目的是提供的上述寡核苷酸可作為引物用於核酸擴增反應，或者作為探針用於雜交反應，或者用於製造基因晶片或微陣列，從而通過這些方法檢測和鑑定大腸桿菌O130型的O-抗原及檢測和鑑定大腸桿菌O130型。
本發明的還一目的是提供了分離大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的全序列的方法。按照本方法操作可以獲得其他細菌的O-抗原基因簇的全序列，也可以獲得編碼其他多糖抗原的細菌的基因簇的全序列。
本發明的目的是由以下技術方案實現的。
本發明對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸，其是如SEQ ID NO1所示的分離的核苷酸，全長10990個鹼基；或者具有一個或多個插入、缺失或取代的鹼基，同時保持所述分離的核苷酸功能的SEQ ID NO1的核苷酸。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸，其中包括命名為wzx，orf2，orf3，wzy，orf5，orf6，orf7，gne的8個基因組成，都位於galF基因和gnd基因之間。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸，其中所述基因中具有高度特異性的基因是轉運酶的基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因；聚合酶基因wzy基因或與wzy有相似功能的基因；糖基轉移酶基因，包括orf5、orf6、orf7基因；其中所述的基因wzx是SEQ ID NO1中的1406至2644鹼基的核苷酸；wzy是SEQ ID NO1中的4622至5737鹼基的核苷酸；orf5是SEQ ID NO1中的5727至6665鹼基的核苷酸；orf6是SEQ ID NO1中的6736至7779鹼基的核苷酸；orf7是SEQ ID NO1中的7779至8531鹼基的核苷酸。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸，其中它是源於所述的wzx基因、wzy基因或糖基轉移酶基因orf5、orf6、orf7基因；以及它們的混合或它們的重組。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸，其中所述的源於wzx基因的寡核苷酸對是SEQ ID NO1中的3093至3110鹼基的核苷酸和3521至3538鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的2511至2527鹼基的核苷酸和3050至3065鹼基的核苷酸。源於wzy基因的寡核苷酸對是SEQ ID NO1中的5812至5827鹼基的核苷酸和6191至6206鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5758至5777鹼基的核苷酸和6533至6551鹼基的核苷酸。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸在檢測表達O-抗原的細菌、鑑定細菌的O-抗原和細菌的其它多糖抗原中的應用。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸的重組分子，在通過插入表達而提供表達大腸桿菌O130型的O-抗原，及製備細菌疫苗中的應用。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸的應用，其特徵在於，它作為引物用於PCR、作為探針用於雜交反應與螢光檢測、或者用於製造基因晶片或微陣列，供檢測細菌。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸的分離方法，其特徵在於，其包括下述步驟(1)基因組的提取在培養基中培養大腸桿菌O130型，離心收集細胞；得到的基因組DNA通過瓊脂糖凝膠電泳檢測；(2)通過PCR擴增大腸桿菌O130型中的O-抗原基因簇以大腸桿菌O130型的基因組為模板通過Long PCR擴增其O-抗原基因簇，將得到的PCR產物，用瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物的大小及其特異性，合併該long PCR產物，並用DNA純化試劑盒純化PCR產物；(3)構建O-抗原基因簇文庫將Long PCR純化產物應用鳥槍法構建O-抗原基因簇文庫；(4)對文庫中的克隆測序從文庫中挑選插入片段在1kb以上的克隆用實驗室常用的DNA自動測序儀對克隆中的插入片段進行測序，序列達到100％的覆蓋率，從而獲得O-抗原基因簇的所有序列；
(5)核苷酸序列的拼接及分析應用生物信息學軟體拼接和編輯所有的序列，從而得到大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的核苷酸全長序列；(6)特異基因的篩選針對大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的wzx、wzy基因設計引物；在每個基因內各設計了兩對引物，每對引物分布在相應基因內的不同地方，以確保其特異性；用這些引物以166株大腸桿菌和43株志賀氏菌的基因組為模板進行PCR，確定wzx、wzy基因對大腸桿菌O130型的O—抗原的高度特異性；(7)引物靈敏度的檢測培養大腸桿菌O130，細菌計數後分別將5×103，5×102，5×101，5個和0個活菌加入到一定量的某種待檢測物中，混入細菌的待檢測物作為檢測用樣品，將樣品加入LB培養基，取一些與樣品混合過的LB培養基過濾，將過濾液進行培養，從培養好的菌液中取數毫升處理後作為PCR模板用寡核苷酸進行PCR反應，檢測其對大腸桿菌O130的靈敏度。
前述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸的分離方法，其特徵在於，其包括下述步驟(1)基因組的提取在5mL的LB培養基中37℃過夜培養大腸桿菌O130型，離心收集細胞。用500ul 50mM Tris-HCl(pH8.0)和10ul 0.4M EDTA重懸細胞，37℃溫育20分鐘，然後加入10ul 10mg/ml的溶菌酶繼續保溫20分鐘。之後加入3ul 20mg/ml的蛋白酶K、15ul 10％SDS，50℃溫育2小時，再加入3ul 10mg/ml的RNase，65℃溫育30分鐘，加等體積酚抽提混合物，取上清再用等體積的酚∶氯仿∶異戊醇(25∶24∶1)混合溶液抽提兩次，取上清再用等體積的乙醚抽提以除去殘餘的酚。上清用2倍體積乙醇沉澱DNA，用玻璃絲卷出DNA並用70％乙醇洗DNA，將DNA重懸於30ul TE中；基因組DNA通過0.4％的瓊脂糖凝膠電泳檢測；(2)通過PCR擴增大腸桿菌O130型中的O-抗原基因簇以大腸桿菌O130型的基因組為模板通過Long PCR擴增其O-抗原基因簇，首先根據經常發現於O-抗原基因簇啟動子區的galF序列設計上遊引物(#1523-ATT GTG GCTGCA GGG ATC AAA GAA AT)，再根據O-抗原基因簇下遊的gnd基因設計下遊引物(#1524-TAG TCG CGT GNG CCT GGA TTA AGT TCG C)；用Boehringer Mannheim公司的Expand Long Template PCR方法擴增O-抗原基因簇，PCR反應程序如下在94℃預變性2分鐘；然後94℃變性10秒，60℃退火15秒，68℃延伸15分鐘，這樣進行30個循環，最後，在68℃繼續延伸7分鐘，得到PCR產物，用0.8％的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物的大小及其特異性，合併5管long PCR產物，並用Promega公司的Wizard PCR Preps純化試劑盒純化PCR產物；(3)構建O-抗原基因簇文庫用被修改的Novagen DNaseI shot gun法構建O-抗原基因簇文庫，反應體系是300ng PCR純化產物，0.9ul 0.1M MnCl2，1ul 1∶2000稀釋的1mg/ml的DNaseI，反應在室溫中進行，酶切10分鐘使DNA片段大小集中在1.5kb-3kb之間，而後加入2ul 0.1M EDTA終止反應。合併4管同樣的反應體系，用等體積的酚抽提一次，用等體積的酚∶氯仿∶異戊醇(25∶24∶1)混合溶液抽提一次，再用等體積的乙醚抽提一次後，用2.5倍體積的無水乙醇沉澱DNA，並用70％乙醇洗沉澱，最後重懸於18ul水中，隨後在此混合物中加入2.5ul dNTP(1mMdCTP，1mMdGTP，1mMdTTP，10mMdATP)，1.25ul 100mMDTT和5單位的T4DNA聚合酶，11℃ 30分鐘，將酶切產物補成平端，75℃終止反應後，加入5單位的Tth DNA聚合酶及其相應的緩衝液並將體系擴大為80ul，70℃反應20分鐘，使DNA的3′端加dA尾。此混合物經等體積氯仿∶異戊醇(24∶1)混合溶液抽提和等體積乙醚抽提後與Promega公司的3×10-3的pGEM-T-Easy載體於16℃連接10小時，總體積為90ul。其中有9ul的10×buffer和25單位的T4DNA連接酶，最後用1/10體積的3M NaAc(pH5.2)和2倍體積的無水乙醇沉澱連接混合物，再用70％乙醇洗沉澱，乾燥後溶於30ul水中得到連接產物；用Bi0-Rad公司的電轉化感受態細胞的製備方法製備感受態大腸桿菌DH5α細胞，取2-3ul連接產物與50ul感受態大腸桿菌DH5α混合後，轉到Bi0-Rad公司的0.2cm的電擊杯中電擊，電壓為2.5千伏，時間為5.0毫秒至6.0毫秒，電擊後立即在杯中加入1ml的SOC培養基使菌復甦，然後將菌塗在含有氨苄青黴素、X-Gal和IPTG的LB固體培養基上，在37℃過夜培養，次日得到藍白菌落，將得到的白色菌落即白色克隆轉到含有氨苄青黴素的LB固體培養基上培養，同時從每個克隆中提取質粒，並用EcoRI酶切鑑定其中的插入片段的大小，得到的白色克隆群構成了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇文庫；(4)對文庫中的克隆測序從文庫中挑選插入片段在1kb以上的96個克隆用本實驗室ABI3730型DNA自動測序儀對克隆中的插入片段進行測序，序列達到100％的覆蓋率，從而獲得O-抗原基因簇的所有序列；(5)核苷酸序列的拼接及分析用英國劍橋MRC(Medical Research Council)分子生物學實驗室出版的Staden package軟體包的Pregap4和Gap4軟體拼接和編輯所有的序列，從而得到大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的核苷酸全長序列；序列的質量主要由兩個方面來保證1)對大腸桿菌O130型的基因組作5個Long PCR反應，然後混合這些產物以產生文庫，2)對每個鹼基，保證3個以上高質量的覆蓋率，在得到大腸桿菌O130型O-抗原基因簇的核苷酸序列後，用美國國家生物技術信息學中心(The National Center forBiotechnology Information，NCBI)的orffinder發現基因，找到8個開放的閱讀框，用blast系列軟體與GenBank中的基因比較以發現這些開放的閱讀框的功能並確定它們是什麼基因，再用英國sanger中心的Artemis軟體完成基因注釋，用Clustral W軟體做DNA和蛋白質序列間的精確比對，最後得到大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的結構；(6)特異基因篩選針對痢大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的wzx、wzy基因設計引物；在每個基因內各設計了兩對引物，每對引物分布在相應基因內的不同地方，以確保其特異性；用這些引物以166株大腸桿菌和43株志賀氏菌的基因組為模板進行PCR，除在第13組中得到了預期大小的一條帶外，在其他組中都沒有擴增到任何產物，所以wzx、wzy基因對大腸桿菌O130型的O-抗原都是高度特異的。
(7)引物靈敏度的檢測購買市場上的生豬肉餡，攪拌均勻，分成20g一份，存在-40℃冰箱中備用。將10μl大腸桿菌O130的凍存菌液接種到有20ml LB培養基的三角瓶中，於37℃，200轉/分，培養12小時至飽和，取少量培養好的菌液作106和107倍的稀釋，其餘的菌液放於4℃的冰箱中備用，取50μl稀釋菌液塗布LB瓊脂平板，37度，培養12h，對所塗平板計數，計算原液中活菌濃度。在5份生豬肉餡中分別摻入5×103，5×102，5×101，5個和0個活菌，攪拌均勻，加入200ml LB培養基，經6層紗布過濾，過濾液於37℃，200轉/分，培養12h。從培養好的菌液中取3ml菌液於6,000g離心5分鐘，去上清，加100μl MQ超純水吹開沉澱並混勻，放入100度沸水中煮15分鐘，裂解液於12,000g離心8分鐘，取1μ上清做為PCR模板。用4對寡核苷酸對，SEQ ID NO1中的3093至3110鹼基的核苷酸和3521至3538鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的2511至2527鹼基的核苷酸和3050至3065鹼基的核苷酸。SEQ ID NO1中的5812至5827鹼基的核苷酸和6191至6206鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5758至5777鹼基的核苷酸和6533至6551鹼基的核苷酸，進行PCR反應，PCR反應體系如下MQ15.7μl，Mg2+2.5μl，Buffer2.5μl，dNTP1μl，Taq酶0.3μl，P11μl，P21μl，模板DNA1μl。PCR反應條件為95℃5′，95℃30″，56℃45″，72℃1′，72℃5′，共30個循環。反應結束後，取10μl反應產物電泳，若有與預期大小相符的擴增帶，則結果為陽性，若沒有，則結果為陰性。參入了5×103，5×102，5×101，和5個活菌的每份豬肉餡均在4對引物的PCR反應中得到陽性結果。參入0個活菌的豬肉餡在4對引物的PCR反應中得到陰性結果。說明使用上述方法時，這4對引物對豬肉餡中的大腸桿菌O130的檢測靈敏度均為0.25個菌/g。
也就是，本發明的第一個方面，提供了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的全長核苷酸序列，它的全序列如SEQ ID NO1所示，全長10990個鹼基；或者具有一個或多個插入、缺失或取代的鹼基，同時保持所述分離的核苷酸功能的SEQ ID NO1的核苷酸。通過本發明的方法得到了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的結構，如表3所示，它包括命名為wzx，orf2，orf3，wzy，orf5，orf6，orf7，orf8的8個基因組成，都位於galF基因和gnd基因之間。本發明的第二個方面，提供了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的基因，即轉運酶基因(wzx基因或與wzx有相似功能的基因)；聚合酶基因(wzy基因或與wzy有相似功能的基因)；糖基轉移酶基因(orf5、orf6、orf7基因)；細菌多糖抗原中特殊的糖合成路徑基因，包括gne基因(orf8)。它們在O-抗原基因簇中的起始位置和終止位置及核苷酸序列都列在表4中；本發明尤其涉及到糖基轉移酶基因、轉運酶基因和聚合酶基因，因為糖合成路徑基因即合成核苷二磷酸單糖的基因現在被預示對較多胞外多糖是常見的、共同的，對細菌的O-抗原並不是很特異的，而本發明涉及到的糖基轉移酶基因、轉運酶基因和聚合酶基因對大腸桿菌O130型的O-抗原是高度特異的。
本發明的第三個方面，提供了源於大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因和糖基轉移酶基因，包括orf5、orf6、off7基因的寡核苷酸，它們是這些基因中的任何一段寡核苷酸。但是，優先被用的是列於表1中的寡核苷酸對，在表1中也列出了這些寡核苷酸對在O-抗原基因簇中的位置及以這些寡核苷酸對為引物所做的PCR反應的產物的大小，這些PCR反應可用表中的退火溫度進行。這些引物除在第13組中得到了預期大小的一條帶外，在其他組中都沒有擴增到任何產物，所以wzx、wzy基因對大腸桿菌O130型的O-抗原都是高度特異的。
所述的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸的分離方法包括下述步驟1)基因組的提取；2)PCR擴增大腸桿菌O130型中的O-抗原基因簇；3)構建O-抗原基因簇文庫；4)對文庫中的克隆測序；5)核苷酸序列的拼接及分析；6)特異基因的篩選；7)引物靈敏度的檢測。
本發明的其他方面由於本文的技術的公開，對本領域的技術人員而言是顯而易見的。
如本發明所用，「寡核苷酸」主要指來源於O-抗原基因簇中的編碼糖基轉移酶的基因、編碼轉運酶的基因和編碼聚合酶的基因內的一段核苷酸分子，它們在長度上可改變，一般在10到20個核苷酸範圍內改變；更確切說這些寡核苷酸是源於wzx基因(核苷酸位置是從SEQ ID NO1中的1406至2644鹼基核苷酸)；wzy基因(核苷酸位置是從SEQ ID NO1中的4622至5737鹼基的核苷酸)。源於以上基因內的寡核苷酸對大腸桿菌O130型是高度特異的。
此外，有時兩個遺傳相似的編碼不同O-抗原的基因簇通過基因重組或突變產生新的O-抗原，從而產生新的細菌類型，新的突變株。在這種環境中，需要篩選出多對寡核苷酸同重組基因雜交以提高檢測的特異性。因此，本發明提供了一整套多對寡核苷酸的混合物，它們源於糖基轉移酶基因；源於轉運酶和聚合酶基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因。這些基因的混合物對一個特殊的細菌多糖抗原來說是特異的，從而使這套寡核苷酸對這個細菌的多糖抗原是特異的。更具體地說，這些寡核苷酸的混合物是源於糖基轉移酶基因、wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因中的寡核苷酸的組合。
在另一方面，本發明涉及寡核苷酸的鑑定，它們可以用於檢測表達O-抗原的細菌和在診斷中鑑定細菌的O-抗原。
本發明涉及到一種檢測食品中的一個或多個細菌多糖抗原的方法，這些抗原可以使樣品能與以下至少一個基因的寡核苷酸特異性雜交，這些基因是(i)編碼糖基轉移酶的基因(ii)編碼轉運酶和聚合酶的基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因。在條件許可的情況下至少一個寡核苷酸能與至少一個表達特殊的O-抗原的細菌的一個以上的那樣的基因特異性雜交，這些細菌是大腸桿菌O130型。可用PCR方法檢測，更可以將本發明方法中的核苷酸標記後作為探針通過雜交反應如southern-blot或螢光檢測，或者通過基因晶片或微陣列檢測樣品中的抗原及細菌。
本發明設計者考慮到以下情況當單個的特異的寡核苷酸檢測無效時，寡核苷酸的混合物能與靶區域特異性雜交以檢測樣品。因此本發明提供了一套寡核苷酸用於本發明所述的檢測方法。這裡所說的寡核苷酸是指源於編碼糖基轉移酶的基因、編碼轉運酶的基因和聚合酶的基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因的寡核苷酸。這套寡核苷酸對一個特殊的細菌的O-抗原來說是特異的，這一特殊的細菌O-抗原是由大腸桿菌O130型表達的。
另一方面，本發明涉及到一種檢測排洩物中的一個或多個細菌多糖抗原的方法，這些抗原可以使樣品能與以下至少一個基因的寡核苷酸特異性雜交，這些基因是(i)編碼糖基轉移酶的基因(ii)編碼轉運酶和聚合酶的基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因。在條件許可的情況下至少一個寡核苷酸能與至少一個表達特殊的O-抗原的細菌的一個以上的那樣的基因特異性雜交。這些細菌是大腸桿菌O130型。可用本發明中的寡核苷酸作引物通過PCR的方法檢測樣品，也可將本發明中的寡核苷酸分子標記後作為探針通過雜交反應如southern-blot或螢光檢測，或者通過基因晶片或微陣列檢測樣品中的抗原及細菌。
一般一對寡核苷酸可能與同樣的基因雜交也可與不同的基因雜交，但它們中必須有一個寡核苷酸能特異性雜交到特殊抗原型的特異序列上，另一個寡核苷酸可雜交於非特異性區域。因此，當特殊的多糖抗原基因簇中的寡核苷酸被重新組合時，至少能選出一對寡核苷酸與多糖抗原基因簇中特異基因混合物雜交，或者選出多對寡核苷酸與特異基因的混合物雜交。甚至即使當一個特殊的基因簇中所有基因都獨一無二時，此方法也能應用於識別此基因簇內的基因混合物的核苷酸分子。因此本發明提供了一整套用於檢測本發明方法的多對寡核苷酸，在這裡多對寡核苷酸是源於編碼糖基轉移酶的基因、編碼轉運酶和聚合酶的基因包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因，這套寡核苷酸對一個特殊的細菌多糖來說是特異的，這套寡核苷酸可能是糖合成中必須基因的核苷酸。
另一方面，本發明也涉及到一種檢測源於病人的樣品中的一個或多個細菌多糖抗原的方法。樣品中的一個或多個細菌多糖抗原可以使樣品能與以下至少一個基因中的一對寡核苷酸中的一個特異性雜交，這些基因是(i)編碼糖基轉移酶的基因(ii)編碼轉運酶和聚合酶的基因，包括wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因。在條件許可的情況下至少一個寡核苷酸能與樣品中的至少一個表達特殊的O-抗原的細菌的一個以上的那樣的基因特異性雜交，這些細菌是大腸桿菌O130型。可用本發明中的寡核苷酸作引物通過PCR的方法檢測樣品，也可將本發明中的寡核苷酸標記後作為探針通過雜交反應，或者通過基因晶片或微陣列檢測樣品中的抗原及細菌。
更詳細地說，以上描述的方法可以理解為當寡核苷酸對被使用時，其中的一個寡核苷酸分子能雜交到一個並不是來源於糖基轉移酶基因、wzx基因或與wzx有相似功能的基因、wzy基因或與wzy有相似功能的基因的序列上。此外，當兩個寡核苷酸都能雜交上時，它們可能雜交於同一基因也可能雜交到不同基因上。也即，當交叉反應出現問題時，可選擇寡核苷酸的混合物來檢測混合的基因以提供檢測的特異性。
本發明者相信本發明不必限於以上所提的核苷酸序列編碼的特定的O-抗原，而且廣泛應用於檢測所有表達O-抗原和鑑定O-抗原的細菌。而且，由於O-抗原合成和其他多糖抗原(如細菌胞外抗原)合成之間的相似性，本發明的方法和分子也應用於這些其他的多糖抗原。
本發明首次公開了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的全長序列，而且可從這個未被克隆的全長基因簇的序列中產生重組分子，通過插入表達可產生表達大腸桿菌O130型的O-抗原，並成為有用的疫苗。
具體實施方式
下面結合具體實施例，進一步闡述本發明。應理解這些實施例僅用於說明本發明而不用於限制本發明的範圍。下列實施例中未註明具體條件的實驗方法，通常按照常規條件如Sambrook等人，分子克隆實驗室手冊(NewYorkCold Spring Harbor Laboratory Press，1989)中所述的條件。
實施例1基因組的提取在5mL的LB培養基中37℃過夜培養大腸桿菌O130型，離心收集細胞。用500ul 50mM Tris-HCl(pH8.0)和10ul 0.4M EDTA重懸細胞，37℃溫育20分鐘，然後加入10ul 10mg/ml的溶菌酶繼續保溫20分鐘。之後加入3ul 20mg/ml的蛋白酶K、15ul 10％SDS，50℃溫育2小時，再加入3ul10mg/ml的RNase，65℃溫育30分鐘。加等體積酚抽提混合物，取上清再用等體積的酚∶氯仿∶異戊醇抽(25∶24∶1)混合溶液提兩次，取上清再用等體積的乙醚抽提以除去殘餘的酚，上清用2倍體積乙醇沉澱DNA，用玻璃絲卷出DNA並用70％乙醇洗DNA，最後將DNA重懸於30ul TE中。基因組DNA通過0.4％的瓊脂糖凝膠電泳檢測。
實施例2通過PCR擴增大腸桿菌O130型中的O-抗原基因簇以大腸桿菌O130型的基因組為模板通過Long PCR擴增其O-抗原基因簇。首先根據經常發現於O-抗原基因簇啟動子區的galF序列設計上遊引物(#1523-ATT GTG GCT GCA GGG ATC AAA GAA AT)，再根據O-抗原基因簇下遊的gnd基因設計下遊引物(#1524-TAG TCG CGT GNG CCT GGATTA AGT TCG C)；用Boehringer Mannheim公司的Expand Long Template PCR方法擴增O-抗原基因簇，PCR反應程序如下在94℃預變性2分鐘；然後94℃變性10秒，60℃退火15秒，68℃延伸15分鐘，這樣進行30個循環。最後，在68℃繼續延伸7分鐘，得到PCR產物，用0.8％的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產物的大小及其特異性。合併5管long PCR產物，並用Promega公司的Wizard PCR Preps純化試劑盒純化PCR產物。
實施例3構建O-抗原基因簇文庫首先是連接產物的獲得用被修改的Novagen DNaseI shot gun法構建O-抗原基因簇文庫。反應體系是300ng PCR純化產物，0.9ul 0.1M MnCl2，1ul1∶2000稀釋的1mg/ml的DNaseI，反應在室溫中進行。酶切10分鐘使DNA片段大小集中在1.5kb-3kb之間，而後加入2ul 0.1M EDTA終止反應。合併4管同樣的反應體系，用等體積的酚抽提一次，用等體積的酚∶氯仿∶異戊醇(25∶24∶1)混合溶液抽提一次，再用等體積的乙醚抽提一次後，用2.5倍體積的無水乙醇沉澱DNA，並用70％乙醇洗沉澱，最後重懸於18ul水中。隨後在此混合物中加入2.5ul dNTP(1mMdCTP，1mMdGTP，1mMdTTP，10mMdATP)，1.25ul 100mM DTT和5單位的T4DNA聚合酶，11℃ 30分鐘，將酶切產物補成平端，75℃終止反應後，加入5單位的Tth DNA聚合酶及其相應的緩衝液並將體系擴大為80ul，70℃反應20分鐘，使DNA的3′端加dA尾。此混合物經等體積氯仿異戊醇(241)混合溶液抽提和等體積乙醚抽提後與Promega公司的3×10-3的pGEM-T-Easy載體於16℃連接10小時，總體積為90ul。其中有9ul的10×buffer和25單位的T4DNA連接酶。最後用1/10體積的3M NaAc(pH5.2)和2倍體積的無水乙醇沉澱連接混合物，再用70％乙醇洗沉澱，乾燥後溶於30ul水中得到連接產物。
其次是感受態細胞的製備參照Bio-Rad公司提供的方法製備感受態細胞大腸桿菌DH5a。取一環大腸桿菌DH5a單菌落於5ml的LB培養基中，180rpm培養10小時後，取2ml培養物轉接到200ml的LB培養基中，37℃ 250rpm劇烈振蕩培養到OD6000.5左右，然後冰浴冷卻20分鐘，於4℃4000rpm離心15分鐘。傾盡上清，用冷的冰預冷的去離子滅菌水200ml吹散菌體，於4℃ 4000rpm離心15分鐘。再用冷的冰預冷的去離子滅菌水100ml吹散菌體，於4℃ 4000rpm離心15分鐘。用冷的冰預冷的10％的甘油懸浮細胞，4℃6000rpm離心10分鐘，棄上清，最後沉澱用1ml冰預冷的10％的甘油懸浮細胞，即為感受態細胞。將製得的感受態細胞分裝為50ul一管，-70℃保存。
最後是電轉化感受態細胞取2-3ul連接產物與50ul感受態大腸桿菌DH5a混合後，轉到Bio-Rad公司的0.2cm的電擊杯中電擊，電壓為2.5千伏，時間為5.0毫秒-6.0毫秒。電擊後立即在杯中加入1ml的SOC培養基使菌復甦。然後立即將菌塗在含有氨苄青黴素、X-Gal和IPTG的LB固體培養基上37℃倒置過夜培養，次日得到藍白菌落。將得到的白色菌落即白色克隆轉到含有氨苄青黴素的LB固體培養基上培養，同時從每個克隆中提取質粒並用EcoRI酶切鑑定其中的插入片段的大小，得到白色克隆群構成了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇文庫。
實施例4對文庫中的克隆測序從文庫中挑選插入片段在1kb以上的96個克隆用本實驗室ABI3730型DNA自動測序儀對克隆中的插入片段單向進行測序，使序列達到100％的覆蓋率，從而獲得O-抗原基因簇的所有序列。
實施例5核苷酸序列的拼接及分析用英國劍橋MRC(Medical Research Council)分子生物學實驗室出版的Staden package軟體包的Pregap4和Gap4軟體拼接和編輯所有的序列，從而得到大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的核苷酸全長序列(見序列列表)。序列的質量主要由兩個方面來保證1)對大腸桿菌O130型的基因組作5個Long PCR反應，然後混合這些產物以產生文庫。2)對每個鹼基，保證3個以上高質量的覆蓋率。在得到大腸桿菌O130型O-抗原基因簇的核苷酸序列後，用美國國家生物技術信息學中心(The National Center for BiotechnologyInformation，NCBI)的orffinder發現基因，找到8個開放的閱讀框，用blast系列軟體與GenBank中的基因比較以發現這些開放的閱讀框的功能並確定它們是什麼基因，再用英國sanger中心的Artemis軟體完成基因注釋，用ClustralW軟體做DNA和蛋白質序列間的精確比對，最後得到大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的結構，如表3所示。
通過檢索和比較，發現發現orf1和orf4是大腸桿菌O130種僅有的兩個編碼存在跨膜片段的蛋白的基因。Orf1編碼的蛋白與Streptococcusthermophilus(AAL32506)的O-抗原轉移酶有19％的序列一致性，43％的相似性，通過HMMTOP2.0程序分析蛋白的拓撲結構發現其含有12個均勻的跨膜片段，這是Wzx蛋白的典型特徵。所以命名orf1為wzx。orf4編碼的蛋白與Bacteroides fragilis(AAG26475)的O-抗原聚合酶有26％的一致性，48％的相似性，通過HMMTOP2.0程序分析蛋白的拓撲結構發現其含有11個跨膜片段，並且有一個大的胞質內親水環(loop)，這是Wzy蛋白的典型特徵。所以命名orf4為wzy。
orf5，6，7三個基因編碼的蛋白與其他已知的糖基轉移酶有33-52％的序列一致性和53-68％的序列相似性。通過對Pfam中糖基轉移酶基序資料庫的搜索，這三個基因編碼的蛋白與已知的糖基轉移酶家族的共有序列的同源性預期值非常高，因此我們推測這三個基因編碼糖基轉移酶，而且由於每個糖基轉移酶特異性催化形成一種二糖鍵，因此我們推測大腸桿菌O130的O-抗原的寡糖單位可能由四個單糖組成。由於這三個基因的確切功能還不能確定，因此我們將這三個基因暫命名為orf5，orf6和orf7。
通過對Pfam蛋白基序資料庫的搜索，發現Orf2的功能不能確定，因此我們將這個基因暫命名為Orf2。Orf3編碼的蛋白與Clostridium perfringens str.13的中編碼的glycero-phosphotransferase蛋白有很高的26％胺基酸序列一致性和45％的相似性，通過對Pfam蛋白基序資料庫的搜索，發現orf3編碼的蛋白與已知的CDP-GlycerolPoly(glycerophosphate)gl的共有序列的同源性預期值為6.5e-08，由於這個基因的確切功能還不能確定，因此我們將這個基因暫命名為orf3。
Orf8編碼的蛋白與Yersinia enterocolitica(type 08)的中gne基因編碼的蛋白有很高的胺基酸序列一致性(60％)和相似性(73％)，通過對Pfam蛋白基序資料庫的搜索，發現orf8編碼的蛋白與已知的gne基因的共有序列的同源性預期值非常高，因此我們將這個基因暫命名為gne基因。
實施例6特異基因的篩選針對大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的wzx、wzy基因設計引物，在每個基因內各設計了兩對引物，每對引物分布在相應基因內的不同地方，以確保其特異性；用這些引物以166株大腸桿菌和43株志賀氏菌的基因組為模板進行PCR，除在含大腸桿菌O130的第13組中得到了預期大小的一條帶外，在其他組中都沒有擴增到預期片段大小的正確產物，所以wzx、wzy基因對大腸桿菌O130型的O—抗原都是高度特異的；這些基因在核苷酸序列中的位置見表1。
實施例7引物靈敏度的檢測。
購買市場上的生豬肉餡，攪拌均勻，分成20g一份，存在-40℃冰箱中備用。將10μl大腸桿菌O130的凍存菌液接種到有20ml LB培養基的三角瓶中，於37℃，200轉/分，培養12小時至飽和，取少量培養好的菌液作106和107倍的稀釋，其餘的菌液放於4℃的冰箱中備用，取50μl稀釋菌液塗布LB瓊脂平板，37度，培養12h，對所塗平板計數，計算原液中活菌濃度。在5份生豬肉餡中分別摻入5×103，5×102，5×101，5個和0個活菌，攪拌均勻，加入200ml LB培養基，經6層紗布過濾，過濾液於37℃，200轉/分，培養12h。從培養好的菌液中取3ml菌液於6,000g離心5分鐘，去上清，加100μl MQ超純水吹開沉澱並混勻，放入100度沸水中煮15分鐘，裂解液於12,000g離心8分鐘，取1μ上清做為PCR模板。用4對寡核苷酸對，SEQ ID NO1中的3093至3110鹼基的核苷酸和3521至3538鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的2511至2527鹼基的核苷酸和3050至3065鹼基的核苷酸。SEQ ID NO1中的5812至5827鹼基的核苷酸和6191至6206鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5758至5777鹼基的核苷酸和6533至6551鹼基的核苷酸，進行PCR反應，PCR反應體系如下MQ15.7μl，Mg2+2.5μl，Buffer2.5μl，dNTP1μl，Taq酶0.3μl，P11μl，P21μl，模板DNA1μl。PCR反應條件為95℃5′，95℃30″，56℃45″，72℃1′，72℃5′，共30個循環。反應結束後，取10μl反應產物電泳，若有與預期大小相符的擴增帶，則結果為陽性，若沒有，則結果為陰性。參入了5×103，5×102，5×101，和5個活菌的每份豬肉餡均在4對引物的PCR反應中得到陽性結果。參入0個活菌的豬肉餡在4對引物的PCR反應中得到陰性結果。說明使用上述方法時，這4對引物對豬肉餡中的大腸桿菌O130的檢測靈敏度均為0.25個菌/g。
通過對O抗原基因簇的克隆和在減毒的疫苗菌株中的表達，可以組建重組疫苗。O抗原為最主要的革蘭氏陰性菌的表面抗原，可以引起強烈的免疫反應，是製造重組疫苗的最好的靶分子之一。在1993年Viret實驗室成功的將志賀氏菌Sonnei的O抗原基因簇在一株沙門氏菌Tyziai疫苗菌中表達，動物實驗證明可以引起兔子的免疫反應(Molecular Microbiology 1993，7239-252)。中國軍事醫學科學院的小組也在從事與Viret實驗室類似的工作。王磊實驗室在1999年成功的將大腸桿菌O111的O抗原基因簇在沙門氏菌疫苗STM-1中表達，並證明組建成的菌株可以引起小鼠的血液和體液反應(Microbial Pathogenesis 1999，2755-59)。所以本發明O130的O抗原特異基因序列可以應用於組建重組疫苗。
根據本發明的對大腸桿菌O130型的O-抗原特異的核苷酸序列(SEQ IDNO1所示)，構造特異核酸探針，將其固定到晶片的載體上製成生物晶片，將要檢測的樣品適當處理後，與生物晶片進行雜交反應，然後利用生物晶片信號分析設備就可以得到樣品中相應的細菌情況。這種大腸桿菌O抗原鑑定的DNA晶片將可以直接用於臨床和其它檢驗場所(如食品加工和生產行業，畜牧獸醫行業海關檢疫等的微生物檢驗)。這種晶片只需要擴大產量，在完全相同的條件下就可以產業化。
表1列出了大腸桿菌O130型的O抗原基因簇中糖基轉移酶基因和寡糖單位處理基因及基因內的引物及PCR數據。在表中列出了大腸桿菌O130型的O抗原基因簇的糖基轉移酶基因、轉運酶基因和聚合酶基因及它們的相應的功能和大小。在每個基因內，我們各設計了兩對引物，每對引物分布在相應基因內的不同地方以確保其特異性。在表中還列出了每個引物在SEQ IDNO1中的位置和大小。以每對引物用表中所列的相應的退火溫度以表2中的所有菌的基因組為模板進行PCR，得到了相應的PCR產物，其大小也列於表中。
表2是用於篩選特異基因的166株大腸桿菌和43株志賀氏菌及它們的來源，為了檢測的方便，我們將它們每12-19個菌分為一組，總共12組，它們的來源都列於表中。
在第13組中含有大腸桿菌O130型的基因組DNA作為陽性對照。以每組菌做模板，用表1中的每對引物按如下條件做PCR在95℃預變性5分鐘後，95℃變性30秒，退火時間是30秒，溫度見表1，72℃延伸2分鐘，這樣進行25個循環。最後在72℃繼續延伸5分鐘，反應體系是25ul。模板為1∶20稀釋，取1μl。反應完畢後，取10ulPCR產物通過0.8％瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增出的片段。
對於wzx、wzy基因，每個基因都有兩對引物被檢測，每對引物除了在第13組中做PCR後得到了預期大小的正確的一條帶外，在其他組中都沒有擴增到任何大小正確的帶，也就是說，在大多數組中沒有得到任何PCR產物帶，所以wzx、wzy基因對大腸桿菌O130型及其O-抗原是高度特異的。
最後，通過PCR從大腸桿菌O130型中篩選到對大腸桿菌O130型的O-抗原高度特異的基因wzx和wzy基因。而這些基因內的任何一段10-20nt的寡核苷酸對大腸桿菌O130型的O-抗原是特異的，尤其是上述每個基因中的引物即寡核苷酸對經PCR檢測後證實對大腸桿菌O130型是高度特異的。所有的這些寡核苷酸都可用於快速準確地檢測人體和環境中的大腸桿菌O130型，並能鑑定它們的O-抗原。
表3是大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的結構表，在表中列出了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇的結構，共由8個基因組成，每個基因用方框表示，並在方框內寫入基因的名稱，數字表示的是O-抗原基因簇中的開放閱讀框(orf)的順序。在O-抗原基因簇的兩端是galF基因和gnd基因，它們不屬於O-抗原基因簇，我們只是用它們的一段序列設計引物來擴增O-抗原基因簇的全長序列。
表4是大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的基因的位置圖，在圖中列出了大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的所有開放閱讀框在全序列中的準確位置，在每個開放閱讀框的起始密碼子和終止密碼子的下面劃線。在大腸桿菌中開放閱讀框的起始密碼子有兩個ATG和GTG。
SEQ ID NO1序列(SEQUENCE LISTING)110天津生物晶片技術有限責任公司120對大腸桿菌O130型的O抗原特異的核苷酸130對大腸桿菌O130型的O抗原特異的核苷酸1601170PatentIn version 3.2210121110990212DNA213Escherichia coli4001attgtggctg cagggatcaa agaaattctc ctggtaactc acgcgtccaa gaacgcagtc 60gaaaaccact tcgacacctc ttatgaatta gaatctctcc ttgaacagcg cgtgaagcgt 120caactgctgg cggaagtaca atctatctgt ccgccgggcg tgaccattat gaacgtgcgt 180cagggtgaac ctttaggttt aggccactcc attttatgtg cgcgacctgc cattggtgac 240aatccatttg tcgtggtgct gccagacgtt gtgatcgacg acgccagcgc cgacccgcta 300cgctacaacc ttgctgccat gattgcgcgc ttcaatgaaa cgggccgtag ccaggtgctg 360gcaaaacgta tgccgggtga cctctctgaa tactccgtca ttcagacaaa agaaccactg 420gatcgtgaag gtaaagtcag ccgcattgtt gaattcatcg aaaaaccgga tcagccacaa 480acgctggact cagacatcat ggccgttggt cgctatgtgc tttctgccga tatttggccg 540gaacttgaac gcactcaacc tggtgcatgg gggcgtattc agctgactga tgccattgcc 600gaactggcga aaaaacagtc cgttgatgca atgctgatga ctggtgaaag ctacgactgc 660
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*只在大腸桿菌O130型中得到正確的一條帶表2 166株大腸桿菌和43株志賀氏菌及它們的來源


*為了檢測的方便，我們將每13-19個菌分為一組，總共12組，第13組作為陽性對照a.Institute of Medical and Veterinary Science(IMVS)，Anelaide，Australiab.Statens Serum Institut，Copenhagen，Denmarkc.O172和O173來自於Statens Serum Institut，Copenhagen，Denmark，其餘來自於IMVSd.中國預防醫學科學院流行病學研究所表3大腸桿菌O130型O抗原基因結構圖E.coli O130 O-antigen gene cluster


galF wzx orf2 orf3 wzy orf5 orf6 orf7 gne gnd％G+C 30％ 28％ 30％ 29％ 34％ 33％ 30％ 35％content表4大腸桿菌O130型O抗原基因簇基因位置
ATTGTGGCTG CAGGGATCAA AGAAATTCTC CTGGTAACTC ACGCGTCCAA GAACGCAGTC 60GAAAACCACT TCGACACCTC TTATGAATTA GAATCTCTCC TTGAACAGCG CGTGAAGCGT 120CAACTGCTGG CGGAAGTACA ATCTATCTGT CCGCCGGGCG TGACCATTAT GAACGTGCGT 180CAGGGTGAAC CTTTAGGTTT AGGCCACTCC ATTTTATGTG CGCGACCTGC CATTGGTGAC 240AATCCATTTG TCGTGGTGCT GCCAGACGTT GTGATCGACG ACGCCAGCGC CGACCCGCTA 300CGCTACAACC TTGCTGCCAT GATTGCGCGC TTCAATGAAA CGGGCCGTAG CCAGGTGCTG 360GCAAAACGTA TGCCGGGTGA CCTCTCTGAA TACTCCGTCA TTCAGACAAA AGAACCACTG 420GATCGTGAAG GTAAAGTCAG CCGCATTGTT GAATTCATCG AAAAACCGGA TCAGCCACAA 480ACGCTGGACT CAGACATCAT GGCCGTTGGT CGCTATGTGC TTTCTGCCGA TATTTGGCCG 540GAACTTGAAC GCACTCAACC TGGTGCATGG GGGCGTATTC AGCTGACTGA TGCCATTGCC 600GAACTGGCGA AAAAACAGTC CGTTGATGCA ATGCTGATGA CTGGTGAAAG CTACGACTGC 660GGTAAAAAAA TGGGCTATAT GCAGGCGTTT GTGAAGTATG GCTTACGCAA CCTGAAAGAA 720GGGGCGAAGT TCCGTAAAGG GATTGAGAAG CTGTTAAGCG AATAATGAAA ATCTGACCGG 780ATGTAACGGT TGATAAGAAA ATTATAACGG CAGTGAGGAT TCGTGGCGAA AGTAATTTGT 840TGCGAATATT CCTGCCGTTG TTTTATATAA ACAATCAGAA TAACAACGAG TTAGCAATAG 900GATTTTAGTC AAAGTTTTCC AGGATTTTCC TTGTTTCCAG AGCGGATTGG TAAGACAATT 960AGTATATAGG TGGTTTTAAT TTCCGTTGAT TATGGAATGT TCATTACATT AAAAATGTTA 1020ACGCAGTGCA CTGGTAGCTG TTAAGCCAGG GGCGGTAGCG TTAAATTTGA TGCTAAGCGG 1080TAAAAAGAAT ATAGAATGTA ATATTTTATT ATTTATAATC TTTAATCTGG TGTTTCATCA 1140TTGTTTAGTA TGCTCATAAA ATGGTGGCAA AATCATTTTT TTTAAATTTA TAGTAAAATA 1200CGAATTCAGA CATAATGCAA TTATCTCAAT TGAGAGAGAT ACTAATGTTA ATATTTATTG 1260TAATAAATAT TGGAACTATA TAGATAAGAT AATAACTTGT GGATAAGTAG CATAAATTGC 1320TGTGAAAATG GCTGAGCGTG ACCTGTTAAC ATAGAATGGT CATTTATTAA TGCTTGATAT 1380orf1的起始ATTAAGAATA CAAGAAAAAT ATTTCATGAA ATTTACGTTA AAAAAAACAA ATATTCAAAA 1440TAGAAATGTT GTTATTTACT TAATAAGTGA TCTACTTGCA AAGGCCTTGC CATTTTTATT 1500TATTCCAGTA TTGACAAAGT ATCTCACGCC AGAGCAATAT GGCAATATTG CATTATTCAA 1560TATAGGTGTG GAAACCTTTC TTATAATAAT TATTATGGGA GGGAACTCCT ATTATAAGAT 1620TGAATATCCA AAATTTAAAG ACCCAATTCT TTCTTTGTAT ATAATTATAT ATAATGTTAC 1680TTTGTTATTT TTGGTATTTT TTATTTTATC GATAGTAATA TGGTTTTTTT ATGAAAGGAT 1740TTATATTATA GATGTGCTGC CTTTGATATT ATTATGCGCA TATTTTCAGT CGTTATTTTA 1800TTTATATATA AGCTATTATC AATGTAATGA AAAAGCCTTG GTTGTAGGAA TGGTGAATTT 1860ATTTTTCTCA CTATCAAGTT CATTGTTGAT GATTCTATTT CTTGTCGAAT TTAAACAGGC 1920TGAAAGTTCA CGATATTGGT CTTTGTTAGG AGGGCTAATT GCATCCGTAT TATTGTTAGG 1980TAGCATTTTA GCTAACAAAA GCAATAGAAA ATATAAATTA GTCAATAAGA TTGATTTTGA 2040GTTAATTAAG TTTGGAGTCG GAGTGTTTCC GCATGCTGTA AGCTGGTGGG CCAGAAGTGG 2100AATGGAGCGT CTGTTGATTG GTTGGTTCTT ATCCGTATCA ACATTGGGTA TTTATTCGCT 2160AGCTATGCAG TTGACATCCA TAATGCCATT ATTTTGTAAT GCAATCAACC AAGCATTGAT 2220GCCAAGAATT GTAAGGTGTT TAAATGATAA TAAAATTGAA GAAACAAAGA AGATATTAGT 2280TAAGTCATCA CTAATTGTAG CAATAGCATG TGTATTTTCA TCAGTAGTTA TGCCTCTGTT 2340CCTTGGATAT GTTCTTAACG ATAGATACCA TGAGGCCCTA GAGTATTTGC CTTATATGAT 2400TCTATCATTT GTATTTCAAG GTGTAATTAT CATTTATACT AACGTTTTAT ATTTTTATAA 2460ACAAGTAAAA TATCTTTCTG TTGCTACTTT TGGAACGTCA TGCGTTCATT TGTTGCTATC 2520TATGTTGTTG ATAAAAATTA ATTTAAACGT ATATTCTGTA ATAATATCAT CTGTAATCAC 2580GTTTTTATTC GCATCTATTG TACTTGTTAG AAAAGCATAT CAGATAATGA GTGAGAGGTA 2640orf1的終止orf2的起始
TTAAGTGATC TTAACTAAGA TAAAAAATAG ACTAATAATA TTTGTATCTA AATTATTGTA 2700TCAATCCCGT GCCTATTACT ATAGATGTAA AAACAGGAAA AAGAAAAAGA TATTTATTTA 2760TACGGATTCG AGAGGTTATG AGGTAAGCAA CTTATGGAAT AAGAAAAATC CCTTTTCATC 2820ATACGTAGGG GATTTGGTAA AAGAATATAA TGTTGAATAT CATATATGTG AGTACTCGAG 2880TACAACAATA ATTGATTTTT TATATGAATA TTATGGGGAG GGTACTAGAG GGAAAAAATA 2940TGATTACGTA ATTGCGCATG TAGGATTAGT TGATTTTTCT CCAAGGCCAA GAAGTATGGC 3000TAACGATATA ATTAAGAGTA AGTCTCATAA AATTAAATTT TTTAAATGGG ATTTACGGAT 3060GTTTGATAAA TATTTGGAAA GAGAAATTTC ATCAGAAATT TATAATGGCG AATTATTATC 3120TAATTTGTAT GATTGTGAGT TCTTAAAGAA TGAAATCATT CCATTATTAC AAAATATACC 3180CAACTTAATC TACATTGGGT GTAACCCTAT TATATCCAAT TGGCGAGGTA ATTATTGGCA 3240AGACCGACCA AAAGATATCA ACAGAATACT TATGGCATAC AATAGCGTTA TGTTAACTGA 3300ATTAAAAGAA AAGAAAGTTG TTGATATTAA AGATTGGAAT GAATGCGATA TAAGAAATTA 3360TACGGTTGAT AATATACATT TAAATCGAGA AGGTTATAAT AAAATAACAT TGAATCTAAA 3420Orf2的終止Orf3的起始ACAAATATTA ACGGAAATTA AGTGATGAAG TTTATATTTA CAAGATTAGT AATATTTTTA 3480CTTTCTGTAT TCGTTCCAAC CAAAAAAGGT CTTTTTATTT TTGGTAGTTG GTTTGGTAAA 3540AAATATGGTG ACAATACACG AGCTTTGTTT GAACATTTAT CAAATATACA ACCAGAAAAT 3600GTATATTGGT ATACAGATAA TGAAAAGATT GCCTCTAAAA TAATAGCCTC TGGGAATAAA 3660TGTATTTCTG GAGTTAATAT GAAAAATATT TTTTTGCATT TGCGCGCAGA AGCTGTGTTT 3720TGTAATTGTT CTGCAAATTC TGATTTATTA GGGGGGTATA TAAATAAGCG AACAAAGGTA 3780TTTAATCTTT GGCATGGCAC ACCTATGAAA AAAATAGGCA AAGATGCAGT AAAATCCGGA 3840TTGAGTCATA CTCGGCTAGG GATGTCGAAA CCAAACTTAA CATTGAGTCT AATAAAAAAA 3900ATATTACCAA GCACATTTTA TAATTTTTTA AAGTTAGACA CTTATTATTT GGCTAGTTCT 3960CCTGAGGTTT CTAAAATATT ACAGGGAGCA ATGGGGGTGA ACGAAGAAAA AATAATTATT 4020TGTGGTTACC CTAAATTAGA TAAAATCTTT ATAGAAAGTG GATATGCTGA ACCTTACAAA 4080ATTTTGTATG CCCCTACCTA TAGAGGTGAA TATAATAGTG AGTTGGATAT ATTGACAATG 4140TTCGGTTTTA ATATTGAACT TGCGGATAAA GTTTTAAAAG AGAATAAAGC TACTTTGACT 4200ATTAGACTTC ACCCTGCTAA TAAATTGCCA GTAGCTGTAA TTAATAGAAT AAACAATACA 4260AATACAATAT CAATAGATAA TGAAGATGAT ATTTATGAAA GTTTAGGTAA ATATTCACTG 4320GTAATAACTG ATTATTCAAG TGTTTATTTC GATGCATTAG CAGTGGGAAT TAATGTACTG 4380ATTGCTCCAT TTGGTTATAA GGATTATTTA GAAAATGACC GAGATTTGTA TTTTAGCCTA 4440AGTGAGTTAT ATCCAGAACG AATGCCTATT GATTGGAAGG ATTTTTTTGA ACATTTTAGC 4500TATTTTGCGT CGAATAAAAG AGAGCAATTT TCATCCATCA GAAACAAGTT TTACAGCTTT 4560CCATATGCAC CTTGTTCGGA TAAGTTATTA AGTTTGGTAT ATTTAAAATT AGGTAGAGAA 4620Orf4的起始 Orf3的終止TATGTTAACA AAAAGAACTA CTAAAAATAC TAGCTTTCTT TATTTCTCTC TTTTTTGCAT 4680TTATTTTAGT GTAAGTTTTA GCCCGGTCAA TCCAACTTAT ATATTAGGAT GTGGATTAAT 4740TCTTATACTT TTTATGCAAG TTTTGCTTCG TATGAGGATA CAAAAATTTA CACTGATAAC 4800AATTGTTTTC GCTATGATGT TTTTATTGGA ACAATTGATA GGGATTAACA TTGTCTCATT 4860TTATCCTGAG GGTCCTGTAT ATTTAACCCC TTTACTTTTT TCCTATTCTA TTCTGATTTC 4920TGCTTGCGTT ATTGAAGGTT TTCAGGGGTT AAAAAGTGAT TCTAGATTGA TAATATATAA 4980AAGAGTTTAT AATTACGCAA TCATATTTTT AGTTATAGAA TTATTCACTA GAGTTTTGAA 5040TTATAACAAG GAAAACAATG GGTTTTATTC TTTAAAATAT AGTGTTCCTT ATTTTGATTC 5100TAATTTTACT GGGTTGGTTA TTCTTTCGTT ATGTTCATAT TTGCTTTATC TAAAATATGT 5160TAAAGGTAAT GAGCGAAAAA TCCACCGTAG AATTCTATAT TTTTTGTTAT TAGCAACGTT 5220TTCTCGTGGT GCAATAGCTG CATTGATCTT AACTCGTATT GGCTTGGGTA GTAAAAAAAG 5280
AATTAGAGGT AAAGCATTTT TAATAATAGC AGTTGCTGTT GTCATTTTTA GTATGCTAAC 5340GATAGAATAT ATTGAGCAGT CACAAAGTTA TTCATCGATT GATGGGAGTT TTAATAGTAA 5400GTTTTACATT ATTAGCCAAG CGCTATCATT TTATGAAAGT CTTCCAATTC TTGTGCATTG 5460GTTTGGCATT GGAATGGGAA ATACTTCTCA ATTTATAGGT ATATTTGCAC ACAATATATT 5520TGTAACAATG ATCTTAGAAA TGGGGATAGT TGGTACTGTT CTTTTTTTAT TATATGTATT 5580TTATACGTTA AAGTTATCAA ATGGTTATGC ATTATTTATA TGGGTTCCTA TATTTGTTGG 5640CGGAATTTCA CTTTTTAGTG CTTTTTCACC ATTTGCTTTC ATCATCTGTG CTTTAATTTG 5700Orf5的起始Orf4的終止TTGTGAAAAT ATGGTGGATA AAAAATATGA GTTTTAGAGA TAATCCGAAA GTCAGTGTCT 5760TAATCCCTGC GTACAATGTA GCCGAATGGA TTGAAGAATC GCTATTAAGT ATATTAGGGC 5820AATCGTATGA AAATATAGAA GTTATTGTAG TGGATGATTG CTCAACTGAT GGAACGTATG 5880AAATTATACG TCGGGTTGCC GAGAATGAAC CGCGAATGAA GGTTTTAAGA AATGAACGTA 5940ATATGAAAAT AGTAGATACA TTAAATTATG GCTTAACCCA TTGCACAGGT GATTTTGTTT 6000TGAGGCATGA CGGTGATGAT GTATCGGAAA TTAAACGGAT TGAGGTGCAA CTTAAACACC 6060TGTTAGAAAA TGAGCTAGAC TTAGTTGGAA CTCAAATGCT ACCAATTGGT AGGTCTGGTC 6120GAGTTATTGG TGCTCAAAGT AGATTACCTC TATCTCATGA GTTGATCGAA AAGATTGCAA 6180ACTTTAGCTC ACCATTGACC CACATATGGA TATGTAAAAA AGAGATATAT GATAAACTGG 6240GTGGCTATCG TAAGGTACCA TATGCAGAAG ATTTTGATTT TCTGTTAAGG GCGATTGATT 6300CAGGTTTTAA ATGTGGCAAC ACATCTGTTG CGTTAACAAA AATTAGACAT CGTCATGGAA 6360ATACGAGTGA TATTGCTAGT CTTTCCCAGC GTAAAGGATA TTTTTATGCA TTAGAATTGC 6420ATAAACAAAG GAAAGCGCAA AACTATGATA GTTATAATGA TGTTGACGCA GCAAAATTAA 6480TAAAACACAA TAAACTAGTA AACTATTTCC ACTCATTATC TACAAAGTGT TTGCATAAAG 6540CATTTCAGAG CAATAATAAA TTAGAAATGT TTTTTTATAC ATTGCTATCG GCAGTAATGT 6600CATTTTATAA TGCGCATTAT ATATATCAAA GAATCAAAGT TAAAATGCTA TTAAGCAACC 6660Orf5的終止AGTAGTATTT TTATATTGGA AGGACTTGCT AAGATTATTT ATTTTCTACA ATGAGAGGAA 6720Orf6的起始TTGCAAATAT AAATTATGAG GATACTAATT TTAATAGAAG ATATAACGTT AGGTGGAGGC 6780ACTGAACGCG TAGCCCTCAC ATTAGCGACA AATTTAAATG CTGACGGAAT TAATTGTGAT 6840ATATTTTCAC TTTCAAAATC AAATACGGAT ACATTTTATC CGTCAGAGAA TATTAATATA 6900TGTTATGCTA AGTCGAAGGT TGGTGTTTTT GCAAAAATTG AAGCAATTAA ATATGCAAAA 6960AAAAACAATA TGAAACTGTT AGTTTTTTCT ATGGGGAGGT TGTCTGTTGA AATCGCTTTA 7020CTTAGCAGAC TCTTCTTATT TAGGCATTTT GGCTGCTACG AGCATATTTC TTTCTCATCA 7080TTTTCTGGTT TTATCCAAAA AATCAAATTA TTCGCATACC GTTTATCCCA TGGTGTTATT 7140TTTTTGACTG AGCATGATCG TGATATAATT CGACATAAGT TGTCTCATGT CCCAGTTACC 7200TCTATTGAAA ACATTAGTCC TTTTCGAGCA ATAAAAAAAA GTAATGTAGG TGCTAGGAAG 7260AATATTGTTT TAGCTGTGGG ACGATTGACT AATCAGAAAA ATTTTTCTCG TTTAATTAAT 7320TTATGGAGCA TGGTAAACAG ACCTGACTGG AGTTTGATTA TTGCTGGAGA TGGTCCAGAC 7380AGAGATTTCC TTGATAAACA AATTAATCAT TTATGTTTGA AAAACGTAGA GATTGTTGGC 7440GCTGTAAAAG AAATTAGTAA TATGTATTTG GCTTCTAAAA TACTAGTGTT GACATCTCGC 7500TATGAAGGTT TTCCTATGGT AATGGTTGAA GCCCAGTGTT TTGGACTACC TGCAGTTTCA 7560TTTGATTGTA AAACGGGGCC TTCAGAAATC ATAATCAATG AATCTACGGG ATATATAATA 7620CCCTACCATG ATGACTCGCT TTTCATTGAA AAGTTGCAAA GGTTGATAGA TCATCCGAAA 7680GAATTAGAAA CGTTTAGCTA TAATTCAATT AAGAATGCAC AACGTTTTAC ATATGAAAAC 7740Orf6的終止orf7的起始ACTAAGTACA AGTGGTTGGA AATACTAGAG AAAATATAAT GAATGAAAAT GAACATGAAA 7800
TTGTATCAAT TATTATGCCT GCTTATAATG CTGAAGCAAC GATTAAAAGT AGTGTTTATT 7860CAGTTATTGG ACAGACCTTT TCAAAATTTA AGTTGTATAT TATTAATGAT GCGTCAACGG 7920ATTGTACAGA AGAAATTATA AGAAGTTTTG AAGATTCAAG GATTGTTTAT ATCAAAAATG 7980ATTATAATAT AGGTGTGGCC GAATCAAGAA ATAAAGGAAT TAAAAAATGT AAGGGCAAAT 8040ATATTGCTTT CATTGACAGC GATGACCTGT GGGAACCTAA CAAATTGGAA TTACAATATA 8100TTCATTTGAA CGCAGGTATG GACATTGTTT GTTCAAATTA TGTAACTTTC TCTGAAAACC 8160CAATGCGTAT TAAAAATAAA AGAATAGCAC CACAGTACAT AAGATATAAT GATATGCTGA 8220AGTCTAACTT TATCGGTAAT CTTACAGGGA TCTATAACTC GGATAAGTTA GGGAAGATAT 8280ATCAAAAAAA AATAGGCCAC GAAGATTATG TTATGTGGCT TGAATTAATA AAGCGTGCAA 8340AATGTTGTTA TTGCGTTCAA GAATACCTGG CTAAATATCG CGAGTCAAAT AAATCCCTTT 8400CGGGAAATAA GTTAAGAGCA ATTGTATGGC AATGGAGTAT TTATAGAAAA GAATTAAATA 8460TGGGATTAAT CAGTACAATA TATTACTTTT CAAGTTATAT TTATAATGGG ATCTTAAAAA 8520Orf7的終止 orf8的起始GAAACAACTA AACTGGGGAG GGGTATGGCT ATTTTAGTTA CAGGCGGAAC AGGTTATATT 8580GGATCTCATA CGGTTACAGA GTTACTTAAG GAGGGATATG AAGTTATTGT AATTGATAAT 8640CTTATTAACT CTGCATATGA TGTGGTCGAT AGGATAAAGA AACTTTCAAA ACGTGATTTC 8700GTTTTTTATA AAGGTGATAT TACTGATGAA AGTTTATTGT TTAAAATATT TACTGAAAAT 8760AACATCACTG ATGTGATTCA TTTTGCTGGT TTAAAATCTG TAGGCGAATC TTTTTCTAAA 8820CCAGTTGAAT ATTACAATAT AAATGTTACA GGCACGCTAA AATTAGTTAA TGCAATGCTT 8880CTTGCTGGTG TGCAACATAT TATTTTTAGT TCCTCAGCAA CTGTTTATGG AATACCTGAA 8940AAAATACCAT TAACAGAACA ATGTTCTGTA GGTGCAACAA CCAACCCACA TGGAACTTCA 9000AAGTTTATGG CTGAGCGCAT ACTACAAGAT ATTGCTAATG CAAATAAAAA ATTCCATGTC 9060ACCTTATTAA GATATTTCAA CCCAGTGGGT GCTCATCCAT CAGGATTAAT TGGTGAACAG 9120CCTCAAGGAA TTCCAAATAA TTTGGTTCCG TTTTTAACTA TGGTTGCAAG TGGTAAACTT 9180GATATGTTAT CTGTTTTTGG CAATGATTAC CCCACAAAAG ATGGAAGCGG AGTTCGTGAT 9240TATATCCACG TAATGGATTT AGCTGAAGGC CATATAGCAG CATTAAAACA TAATCCGACG 9300CATTCTAATT TCCATGTATA CAATTTAGGT ACTGGTCAAG GATACTCTGT ATTAGAGTTG 9360ATTAAGATAT TTGAAGAAGT TACGGGAATA GCAGTGAAAT ATAATATAGC TGATAGAAGG 9420CCCGGTGATA TAGCAGAATG TTGGGCTGAT CCTTCTTTAG CAGAAGAGGA GCTAAGATGG 9480AGGGCTCATA GGACTATCGA GCAGATGATG GTAGATGCAT GGAATTGGCA ACTTAAAAAC 9540Orf8的終止TGATATAGCT AAGTAGTAAA TTTATTTTGA AAGGCTATGA AGCTTCATTT GAACTAAGTT 9600AATTTTATTT TATCCATAGT GCACACCTTA CTGTGCGTAT GATAGGAGTA AACAATGTCA 9660AAGCAACAGA TCGGCGTCGT CGGTATGGCA GTGATGGGGC GCAACCTTGC GCTCAACATC 9720GAAAGCCGTG GTTATACCGT CTCTATTTTC AACCGTTCCC GTGAGAAAAC GGAAGAAGTG 9780ATTGCCGAAA ATCCAGGCAA AAAACTGGTT CCTTACTATA CGGTGAAAGA GTTCGTTGAA 9840TCTCTGGAAA CGCCTCGTCG CATCCTGCTG ATGGTGAAAG CAGGTGCAGG CACGGATGCT 9900GCTATTGATT CCCTCAAGCC ATACCTCGAT AAAGGTGACA TCATTATTGA TGGTGGTAAT 9960ACCTTCTTCC AGGACACTAT TCGTCGTAAT CGTGAGCTTT CTGCAGAAGG CTTTAACTTC 10020ATCGGTACGG GTGTTTCTGG TGGTGAAGAA GGTGCGCTGA AAGGACCTTC CATCATGCCT 10080GGTGGCCAGA AAGAAGCCTA TGAACTGGTT GCTCCGATCC TGACGAAAAT CGCCGCAGTG 10140GCTGAAGACG GTGAGCCATG CGTTACCTAT ATGGGTGCCG ATGGGCGCAG GTCACTATGT 10200GAAGATGGGT TCACAACGGG TATCGAATAC GGTGATATGC AACTGATTGC TGAAGCCTAT 10260TCTCTACTTA AAGGCGGCCT GAACCTTTCC AACGAAGAGT TGGCGCAGAC CTTTACCGAG 10320TGGAATAACG GTGAACTGAG CAGCTACCTG ATCGACATCA CCAAAGATAT CTTCACCAAA 10380AAAGATGAAG ACGGTAACTA CCTGGTTGAT GTGATTCTGG ATGAAGCAGC AAACAAAGGT 10440
ACGGGCAAAT GGACCAGCCA GAGTGCGCTG GATCTCGGCG AACCGCTGTC GCTGATTACC 10500GAGTCTGTGT TTGCACGTTA TATCTCTTCT CTGAAAGATC AGCGTGTTGC CGCATCTAAA 10560GTTCTCTCTG GCCCGCAAGC GCAGCCAGCA GGCGATAAGG CTGAGTTTAT CGAGAAAGTT 10620CGTCGTGCGC TGTATCTGGG CAAAATCGTT TCTTATGCTC AGGGCTTCTC TCAGCTGCGT 10680GCTGCGTCTG AAGAGTACAA CTGGGATCTG AACTACGGCG AAATCGCGAA GATTTTCCGT 10740GCTGGCTGTA TCATCCGTGC GCAGTTCCTG CAGAAAATCA CTGATGCATA TGCTGAAAAC 10800CCCCTGCTCG CTAACTTGCT GCTGGCTCCG TACTTCAAGC AAATTGCCGA TGACTATCAG 10860CAGGCACTGC GCGATGTTGT CGCTTATGCA GTACAGAATG GTATCCCGGT TCCGACCTTC 10920GCCGCTGCGG TTGCCTATTA TGACAGCTAC CGCGCCGCTG TTCTGCCTGC GAACCTAATT 10980CAGGCCCAGC 10990以上所述，僅是本發明的較佳實施例而已，並非對本發明作任何形式上的限制，凡是依據本發明的技術實質對以上實施例所作的任何簡單修改、等同變化與修飾，均仍屬於本發明技術方案的範圍內。
權利要求
1.一種寡核苷酸，其特徵在於，選自SEQ ID NO1中的3093至3110鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的3521至3538鹼基的核苷酸；SEQ IDNO1中的2511至2527鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的3050至3065鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5812至5827鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的6191至6206鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5758至5777鹼基的核苷酸；SEQ IDNO1中的6533至6551鹼基的核苷酸。
2.一種寡核苷酸對，其特徵在於，選自SEQ ID NO1中的3093至3110鹼基的核苷酸和SEQ ID NO1中的3521至3538鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的2511至2527鹼基的核苷酸和SEQ ID NO1中的3050至3065鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5812至5827鹼基的核苷酸和SEQ ID NO1中的6191至6206鹼基的核苷酸；SEQ ID NO1中的5758至5777鹼基的核苷酸和SEQ IDNO1中的6533至6551鹼基的核苷酸。
3.權利要求
1的核苷酸或權利要求
2的核苷酸對的應用，其特徵在於，它作為引物用於PCR，或者作為探針用於雜交反應與螢光檢測、製造基因晶片或微陣列，供檢測大腸桿菌O130型。
專利摘要
本發明提供一種對大腸桿菌O130型(Escherichia coli O130)的O-抗原特異的核苷酸，它是大腸桿菌型中控制O-抗原合成的基因簇的核苷酸全序列，如SEQ ID NO:1所示的分離的核苷酸，全長10990個鹼基；或者具有一個或多個插入、缺失或取代的鹼基，同時保持所述分離的核苷酸功能的SEQ ID NO:1的核苷酸；還包括源於大腸桿菌O130型的O-抗原基因簇中的糖基轉移酶基因和寡糖單位處理基因的寡核苷酸；本發明通過PCR證實寡核苷酸對大腸桿菌O130型的O-抗原都有高度的特異性；本發明還公開了用本發明的寡核苷酸檢測和鑑定人體及環境中的大腸桿菌O130型的方法。
文檔編號C12P19/00GKCN1234863SQ200410019039
公開日2006年1月4日 申請日期2004年4月19日
發明者王磊, 王威, 馮露 申請人:天津生物晶片技術有限責任公司導出引文BiBTeX, EndNote, RefMan