Rsv基因表達疫苗的製作方法

2023-12-09 09:16:11

專利名稱：Rsv基因表達疫苗的製作方法
技術領域：
本發明總體上涉及基因表達疫苗。更具體地，本發明涉及可鼻內或經口施用的基因表達疫苗。
背景技術：
呼吸道合胞病毒(RSV)是造成嬰兒和兒童下呼吸道病毒性感染最常見的原因，全球每年約感染4百萬兒童並導致約100,000人入院治療，且僅在美國就導致4,500例死亡。RSV感染與兒童的支氣管炎、支氣管阻塞和哮喘加重的復發事件有關。RSV感染誘發的支氣管炎的發病率一直在升高。目前尚無抗RSV感染的有效預防措施。先前嘗試研發的福馬林滅活的RSV疫苗不僅無效，而且當隨後發生RSV感染時還可使疾病加重。(Chanock等，由呼吸道合胞病毒引起的嚴重呼吸道疾病改進的治療和免疫的前景，兒科學(Pediatrics)，1992；90137-43)。此外，對RSV治療的研發由於其潛伏期短而受到限制。因此，研發RSV疫苗已在全球範圍內具有高度的重要性。
大多數RSV抗原在人和小鼠中具有免疫原性，但F和G抗原產生大多數的抗RSV中和抗體。(Connors等，呼吸道合胞病毒(RSV)的F、G、M2(22K)和N蛋白均誘導產生對RSV攻擊的抗性，但M2和N蛋白誘導的抗性存在時間相對較短，病毒學雜誌(J Virol)，65.1634，1991；Wyatt等，通過重組的複製缺陷型痘苗病毒MVA對呼吸道合胞病毒的初次和加強免疫，疫苗(Vaccine)18392，1999)。人類CTL庫的分析表明N、SH、F、M、M2和NS2蛋白為強的靶抗原。類似地，在BALB/c小鼠中，F、N且特別是M2蛋白顯示為CTL活性的主要靶抗原。(Domachowske等，呼吸道合胞病毒感染免疫反應、免疫病理和治療，臨床微生物學綜述(ClinMicrobiol Rev)12298，1999)。病毒特異的細胞毒T淋巴細胞在清除RSV感染中起到主要作用。血清和黏膜抗體以及MHC I類限制的細胞毒T淋巴細胞(CTLs)均介導抗RSV感染的保護。(Brandenburg等，RSV下呼吸道感染的發病機理對疫苗研發的啟示，疫苗(Vaccine)192769，2001)。先前，被動施用中和血清抗體顯示可在動物模型和人中降低RSV疾病的危險。(Groothuis等，靜脈應用γ球蛋白被動免疫對呼吸道合胞病毒高危的兒童安全性和藥物動力學。RSVIG研究組，抗微生物劑的化學治療(Antimicrob Agents Chemother)。1991年7月；35(7)1469-73；Hemming等，在預防和治療呼吸道合胞病毒感染中的超免疫球蛋白，臨床微生物述評(Clin Microbiol Rev.)，1995年1月；8(1)22-33.綜述)。
至今為止所研究的疫苗研究包括由RSV的F、G和/或M2蛋白組成的亞單位、肽或DNA疫苗。肌內注射編碼RSV的F或G蛋白的pDNA在小鼠中有效(Li等，通過DNA免疫保護免受呼吸道合胞病毒感染，實驗醫學雜誌(J Exp Med)1998年8月17日；188(4)681-8；Li等，編碼呼吸道合胞病毒G蛋白的質粒DNA為有希望的侯選疫苗，病毒學(Virology)。2000年3月30日；269(1)54-65)。在棉鼠模型中，F-G疫苗誘導的中和抗體滴度與活RSV相比低1-2個數量級。(Prince等，重組嵌合呼吸道合胞病毒FG糖蛋白疫苗在棉鼠中的功效和安全性研究，病毒學雜誌(J Virol)。2000年11月；74(22)10287-92)。應用可體內表達引起保護性細胞和體液免疫反應的抗原的質粒DNA(pDNA)進行免疫，宣稱該pDNA與其他疫苗相比具有多種優勢。但是，每單位體重應用的DNA量以及選擇的施用途徑使這些疫苗並不適於人類應用。(Guy等，用於流感片段疫苗的陽離子脂類佐劑的設計、特徵和臨床前功效，疫苗(Vaccine)191794，2001)。
目前，對於患RSV感染的高危嬰兒的一個可獲得的選擇是，以一個月的間隔被動免疫人源化的抗RSV-F抗原的抗體。儘管不方便、昂貴且部分有效，但由於沒有安全有效的抗RSV疫苗，被動免疫通常被認為是唯一的選擇。
因此，仍然需要能夠產生抗RSV的黏膜免疫的DNA疫苗。由於2到6個月的嬰兒最容易感染RSV且疫苗接種優選地在一個月齡的嬰兒進行，且由於認為黏膜疫苗更適於在這些局部和全身免疫系統還不成熟的嬰兒中產生局部免疫，因此黏膜RSV疫苗成為優選。
發明概述本發明提供了基因表達疫苗(GXV)，所述疫苗包含以脫乙醯殼多糖納球形式存在的編碼相應RSV抗原的質粒DNA的混合物。在第一個實施方案中，混合物包含的組合含有F、G以及含有M、M2、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原中的至少一個。在一備選實施方案中，混合物為包含M2和包含F、G、M、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原中至少一個的組合。在另一備選實施方案中，混合物包含的組合含有F、G、M2和含有M、SH、NS1、NS2、N、P RSV抗原中的至少一個。GXV抗RSV安全且有效，可顯著減輕RSV感染誘發的肺部炎症，且可鼻內或經口施用。不被理論所束縛，且GXV有效性的確切細胞和分子機制仍有待研究，但認為途徑、免疫原性抗原的組合和/或與脫乙醯殼多糖的結合可能對其有效性起到作用。
因此，在第一實施方案中，本發明涉及抗RSV感染的預防性黏膜疫苗。
在進一步的實施方案中，應用RSV基因表達文庫研發疫苗，所述疫苗以脫乙醯殼多糖納球形式製劑以通過經鼻或經口途徑進行遞送。
在進一步的實施方案中，疫苗的施用並不誘發呼吸道的高反應性。
在進一步的實施方案中，提供的基因表達疫苗具有兩種不同的組分賦予疫苗能力的pDNA混合物以及賦予佐劑活性的脫乙醯殼多糖。
在進一步的實施方案中，基因表達疫苗提供的誘導免疫與活病毒感染所產生的免疫相當。
在進一步的實施方案中疫苗以約25μg的混合物/小鼠的單劑提供時是有效的。
在進一步的實施方案中疫苗誘導產生對多抗原，且優選地為對9種抗原的抗體。
在進一步的實施方案中，公開了製備GXV疫苗的方法，其中將除外L抗原的所有RSV抗原的cDNA克隆到pVAX質粒中，且混合物與脫乙醯殼多糖團聚以製劑成納球。
在進一步的實施方案中，疫苗誘導特異IgG滴度、鼻的IgA滴度增加，並提高IFN-γ在肺以及脾組織中的產量。
本領域內的技術人員從隨後描述的了解中將會明曉其他的對象和優點，所述描述參照以下說明性圖表進行。
附圖簡述

圖1(A-B)圖1A顯示鼻內免疫GXV後RSV cDNA的表達；泳道Bp為分子量標記，標為NS1、NS2、M、SH、F、M2、N、G和P的泳道指與RSV cDNA對應的PCR產物。圖1B顯示鼻內免疫GXV後RSV cDNA的表達；免疫印跡分析泳道Kd為分子量標記；1泳道和2泳道為經和未經RSV感染的HEp-2細胞的提取物。
圖2(A-C)圖2A顯示由鼻內施用PBS、裸DNA和GXV的小鼠肺中所來源的RSV的空斑形成單位。圖2B顯示鼻內施用PBS、裸DNA和GXV的小鼠肺中所來源的RSV的抗原載量，所述抗原載量通過ELISA檢測。圖2C顯示鼻內施用PBS、裸DNA和GXV的小鼠對乙醯甲基膽鹼的反應性，所述反應通過全身體積描記器檢測。乙醯甲基膽鹼反應性測量表示為基線暫停增加(enhanced pause)百分比(Penh)。
圖3(A-C)圖3A顯示GXV免疫後抗RSV抗體反應。BALB/c小鼠鼻內施用GXV疫苗(25μg)、裸DNA(25μg)或PBS。免疫後14和21天從小鼠中收集血清，並通過ELISA測定抗RSV抗體。圖3B顯示免疫後RSV中和抗體滴度的測定。RSV懸液與多種血清稀釋度(0.01、0.1和1)孵育並進行中和。圖3C顯示免疫後鼻洗液的IgA抗體反應。免疫14和21天後從動物中收集鼻洗液(i.n)，並通過ELISA測定總IgA抗體水平。
圖4(A-B)圖4A顯示GXV免疫所誘導的RSV特異的CTL的表徵。用25μg GXV、25μg裸DNA或PBS免疫小鼠。三周後用RSV持續感染的纖維母細胞系BCH4刺激免疫脾細胞。用未感染的BC細胞和RSV-感染的BCH4纖維母細胞作為靶標以標準的4小時51Cr釋放試驗測定測定CTL活性。圖4B顯示在BAL液中測定的IFN-γ水平。如上描述所免疫的多組鼠在第16天用RSV感染。在第21天對這些鼠進行BAL，並通過ELISA測定IFN-γ水平。圖4C測定脾細胞培養物中IFN-γ水平。如上免疫的多組小鼠在第16天感染RSV。在第21天處死小鼠並將其脾細胞體外培養在抗CD3抗體包被的平板內，通過ELISA測定培養上清中IFN-γ的水平。
圖5圖5顯示小鼠如前描述進行免疫，並在第16天感染RSV。四天後，處死這些小鼠，移出肺，並用蘇木素和伊紅(HE)對組織切片進行染色。GXV免疫的小鼠與對照相比顯示出較少的上皮損傷和細胞浸潤。
圖6(A-B)圖6A顯示鼻內免疫RGCN後RSV cDNA的表達。BALB/c小鼠鼻內施用克隆在質粒載體pVAX內的RSV抗原(GXV)。每隻小鼠吸入總量為25μg的混合體DNA。三天後完成最後鼻內施用後處死動物並從肺的總RNA中進行RT-PCR。七種RSV mRNA的表達得以顯示。圖6B顯示單獨的GXV並不誘導呼吸道的高反應性。BALB/c小鼠經口施用RGCN疫苗，並在三天後應用全身體積描記器測量呼吸道高反應性。接受GXV的動物與接受裸DNA或僅接受PBS(對照)的動物相比呈現出對乙醯甲基膽鹼攻擊類似的反應。
圖7(A-B)圖7A顯示gRGCN免疫後的抗RSV抗體反應。BALB/c小鼠經口施用GXV(25μg)、僅施用裸DNA(25μg)或PBS。免疫後第14和21天收集動物的血清，並通過ELISA測定抗RSV抗體滴度。與對照相比，以RGCN疫苗免疫的動物呈現出顯著增高的抗體滴度。圖7B顯示RGCN免疫後的IgA抗體反應。BALB/c小鼠經口或鼻內施用RGCN疫苗(25μg)、僅施用裸DNA(25μg)或PBS。免疫後第14和21天收集動物的糞便塊(經口施用)和鼻洗液(鼻內施用)，並通過ELISA測定總IgA抗體滴度。
圖8(A-B)圖8A經口和鼻內免疫小鼠的脾內IFN-γ的表達。接受經口和鼻內RGCN免疫的小鼠在第16天感染RSV。在第21天，處死動物並在體外培養動物的脾臟或進行BAL。α-CD3刺激的脾細胞的表達；經口免疫的動物比鼻內組產生更多的IFN-γ。圖8B顯示經口和鼻內免疫小鼠的BAL液中IFN-γ的表達。與經口免疫組相比，鼻內免疫的小鼠在其BAL液中產生更多的IFN-γ。
圖9圖9顯示經口的GXV減輕鼠肺中的肺部炎症。BALB/c小鼠經口施用GXV或裸DNA(共25μg)。動物在第16天後感染RSV並在4天後(第21天)處死。移出肺並用蘇木素和伊紅(HE)染色組織切片。顯示了代表性的顯微圖片。與對照組相比，接受GXV的小鼠出現上皮細胞損傷減輕和間質空間增厚。
詳細描述在pVAX質粒中構建RSV基因表達文庫，且文庫與脫乙醯殼多糖團聚以製劑成納球，此處稱為RGCN疫苗。
本發明提供了這樣的基因表達疫苗(GXV)，所述疫苗包含編碼相應RSV抗原的質粒DNA的混合物。該混合物包含F、G、M、M2、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原的組合。該混合物可包含含有F、G和至少一種M、M2、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原的組合。備選地，該混合物可包含含有M2和至少一種F、G、M、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原的組合。另外，備選地，該混合物可包含含有F、G、M2和至少一種M、SH、NS1、NS2、N和P RSV抗原的組合。GXV與脫乙醯殼多糖製劑成納球形式，可生物降解，對人類友好，且陽離子聚合物可增加疫苗的黏膜吸附而無任何的副作用。
脫乙醯殼多糖由於其可保護基質中的DNA免受血清核酸酶降解，使DNA的生物利用度提高，且因此具有成為黏膜基因遞送體系的巨大潛力。脫乙醯殼多糖也具有多種有益的功效，包括抗凝活性，傷口癒合特性，免疫刺激活性，且能夠調節黏膜和支氣管相關淋巴樣組織的免疫性。與裸DNA對照相比，脫乙醯殼多糖納球形式的GXV顯著誘導中和IgG抗體滴度，以及鼻IgA滴度和IFN-γ水平。脫乙醯殼多糖提高了GXV的免疫能力。但是，脫乙醯殼多糖增強抗病毒免疫性的詳細機制仍不清楚。需要指出的是，除了非常有效外，GXV還安全，這可通過下述實驗進行證明，即與未免疫的感染組相比伴隨於免疫組的總體肺炎症顯著減輕且在免疫小鼠和未免疫小鼠之間不存在對乙醯甲基膽鹼反應性的改變。考慮到先前可加重疾病的不成功的福馬林滅活疫苗，該結果尤其令人鼓舞。
研究了疫苗引起的體液和細胞免疫。與裸DNA免疫和未免疫對照組相比GXV可顯著提高中和血清和黏膜IgA抗體的水平。儘管分泌型IgA抗體提供的保護是免受通過黏膜途徑進入的病原感染，但分泌型IgA在抗RSV中的作用仍所知甚少。並不希望被理論所束縛，可推測由於RSV是影響上下呼吸道的專性胞內黏膜病原，黏膜IgA可能通過阻止RSV進入黏膜和/或通過抑制其細胞-細胞間合胞體的傳播而避免罹患重症RSV疾病。
與裸DNA和未免疫對照相比，GXV產生明顯較強的CTL反應。這些結果與其他實驗性疫苗的結果一致，明確支持疫苗誘導的CTL在病毒清除中的作用。一些研究表明，CTL抗細胞病變性病毒的保護性效果依賴於其細胞因子如IFN-γ的產生。免疫後GXV顯著促進可用於抗RSV感染的IFN-γ的產生。IFN-γ具有直接的抗病毒作用，且在刺激天然殺傷(NK)細胞和CD8+細胞毒T淋巴細胞(CTL)的溶細胞活性中特別重要，前述細胞在鼠模型和人類的控制RSV感染中起到關鍵作用。
除了GXV的免疫調節活性，由GXV誘導炎症的可能性通過對肺切片的免疫組織學分析進行評估。上皮損傷以及血管周、支氣管周和間質浸潤細胞的半定量分析表明，與裸DNA和未免疫小鼠相比GXV使細胞浸潤和上皮損傷顯著減輕。在裸DNA和GXV間觀察到的顯著差異的原因仍然未知。不希望被理論所束縛，認為與裸DNA相比，GXV作為黏膜系統的天然組份，可能其侵染性較低。也可能由於上皮細胞對裸DNA攝入的減少而導致裸DNA在上皮黏膜下層的積聚加劇了炎症反應。
總之，我們的數據證明，GXV代表了抗RSV感染的新型疫苗設計，僅1mg/kg體重的單劑就能夠在初次感染時將病毒滴度降低兩個數量級(100倍)。該疫苗有效性的免疫機制包括誘導產生高水平的血清IgG和黏膜IgA抗體，產生有效的CTL反應，以及提高肺臟特異的具有抗病毒作用的IFN-γ的產生。由於單劑的GXV疫苗非常有效，因此認為提高劑量以及初次免疫-加強免疫的策略可進一步提高疫苗的效果。此外，GXV顯著減輕肺部炎症且並不改變呼吸道高反應性，這使得該疫苗是安全的。
材料和方法動物六周齡雌性BALB/c小鼠購自Jackson實驗室(Bar Harbor，ME)並在動物中心以無病原條件飼養。所有操作經University of South Florida和James A Haley VA Medical Center Committee on Animal Research進行審查並批准。
基因構建體，脫乙醯殼多糖納球的產生和基因轉移RSV cDNA從RSV感染的小鼠肺cDNA文庫中擴增，所述擴增通過聚合酶鏈反應(PCR)應用Vent聚合酶(New England Biolabs，Beverly，MA)實現，並將其克隆到哺乳表達載體pVAX(Invitrogen，San Diego，CA)中。產生的質粒在大腸桿菌DH5α細胞中增殖。應用Qiagen試劑盒(Qiagen，Chatsworth，CA)根據生產商的說明書進行大規模質粒DNA的製備。該方法產生足夠純度的具有最少內毒素汙染物的DNA。混合pDNA以產生RSVcDNA的混合物。DNA脫乙醯殼多糖納球的產生如由以下所描述Roy，K.，等1999，用脫乙醯殼多糖-DNA納球經口遞送基因在花生過敏的鼠模型中產生免疫保護，自然醫藥(Nat Med)5387。在鼻內免疫的情況下，小鼠在輕度麻醉條件下用DNA混合物脫乙醯殼多糖納球鼻內接種三次。每隻小鼠接受在脫乙醯殼多糖納球中複合的總量為25μg的DNA。對照小鼠接受PBS和裸DNA。
疫苗施用小鼠在輕度麻醉下鼻內(i.n.)施用GXV(25μg的總DNA/小鼠)。對照小鼠接種PBS或等量的裸DNA。免疫後第16天，小鼠鼻內感染1×106pfu的體積為50μl的人RSV A2株(ATCC，Rockville，MD)。感染後(p.i)第5天，處死小鼠，並在無菌條件下取出鼠的肺臟和脾臟進行RT-PCR、組織病理研究、細胞因子和病毒空斑分析。免疫後第14和21天取小鼠血以獲得血清。
動物的病毒感染以及組織、血清的收集最後一次免疫後第16天，小鼠鼻內感染1×106pfu的體積為50μl的人RSV A2株(ATCC，Rockville，MD)。感染後(p.i.)第5天，處死小鼠並無菌取出肺臟和脾臟進行RT-PCR、組織病理研究、細胞因子和病毒空斑分析。末次免疫後第14和21天收集鼠血清。
RSV滴度和肺臟中抗原的定量為定量小鼠肺中的RSV滴度，首先取出整個肺臟稱重，然後立即放入含10％FBS的EMEM培養基中。將肺勻漿化，之後於4℃10,000轉/分鐘離心10分鐘。收集清澈的上清並通過0.45μm的甲基纖維素濾器(GelmanSciences，Ann Arbor，MI)。樣本系列稀釋用於空斑試驗。生長在24孔中蓋玻片上的Hep-2細胞(60-70％匯片)用不同稀釋度的肺勻漿覆蓋並1,000轉/分鐘離心1小時。這可使病毒快速吸附入細胞。將細胞在CO2培養箱中37℃孵育24小時。孵育過後，吸出組織培養基並用PBS洗滌兩次。用冰冷的無水乙醇固定細胞，乾燥，然後在溼盒中與FITC-標記的抗-RSV多克隆抗體(Light Diagnostics，Tennecula，CA)孵育30分鐘。用洗滌緩衝液(PBSTPBS+0.05％吐溫-20，pH 7.4)洗滌細胞兩次並應用fluoromount G(Southern Biotechnology Associates，Birmingham，AL)將蓋玻片放置在載玻片上。在螢光顯微鏡下計數RSV空斑。
RNA提取和RT-PCR分析根據生產商的使用說明應用TRIZOL試劑(Life Technologies，Gaithersburg，MD)從肺組織中分離總細胞RNA。向50-100mg的肺組織加入1ml的Trizol試劑並磨成勻漿。通過吹打將肺勻漿懸浮並置室溫5分鐘進行裂解。每管加入氯仿(200μl)並徹底混合。5分鐘後，於15-20℃以12,000轉/分鐘離心15分鐘沉澱細胞。將清澈的液體上清轉移到新管並加入等體積的異丙醇，充分混合，並在15-20℃以12,000轉/分鐘離心15分鐘。用70％的乙醇洗滌RNA沉澱，空氣乾燥並溶解在經焦碳酸二乙酯處理的水中。對不同的RSV基因進行RT-PCR，如以下所描述的Behera，A.K.等，2001，阻斷人上皮細胞細胞間的粘附分子1降低呼吸道合胞病毒感染，Biochem Biophys Res Comm 280188。
肺功能為評估免疫組和對照組的肺功能，用GXV免疫小鼠。三天後，用全身體積描記器(Buxco Electronics，Troy，NY)非侵入性評價清醒、自由小鼠的呼吸道反應性(即支氣管狹窄)，按以下所描述的進行Matsuo K.等，2000，變態反應原致敏的小鼠中復發性呼吸道合胞病毒感染導致持續的呼吸道感染和高反應性，J.Immunol 1646583。用此系統，在正常呼吸周期中發生的體積改變被記錄為含動物的盒和呼吸參照盒間的壓力差異。產生的信號用於計算呼吸頻率、分鐘體積、潮氣量和暫停增加(Penh)。Penh用於測量支氣管收縮，且由以下的公式計算Penh＝暫停(pause)×(呼氣壓的峰值/吸氣壓的峰值)，其中暫停為呼出至少30％潮氣量所需時間與呼氣總時間的比值。將小鼠放置在體積描記器內並將容器平衡10分鐘。小鼠暴露於霧化的PBS(以建立基線)，之後暴露於逐漸加大劑量(6、12.5、25和50mg/ml)的乙醯甲基膽鹼(Sigma Chemicals，St.Louis，MO)中。每一劑量的乙醯甲基膽鹼霧化5分鐘，之後記錄5分鐘的呼吸測量值。測量期間，每一變量的平均值來自每30次呼吸(或30秒種，不管哪一個首先發生)。每一劑量後的最高Penh值用於測量支氣管收縮的程度。
支氣管肺泡灌洗(BAL)、脾細胞培養和IFN-γ試驗對免疫和對照小鼠進行支氣管肺泡灌洗。感染後第5天過量注射((0.6g/kg)i.p)戊巴比妥(Nembutal(Abbot Laboratories，North Chicago，IL))處死小鼠，並打開胸腔。用2到3ml的冰冷鹽水衝洗肺血管床。暴露氣管並插入與結核菌素注射器連接的26G針。然後用0.5ml的PBS灌洗肺三次並收集支氣管肺泡灌洗液(BALF)。回收的BAL液的體積在灌注的PBS液的75到85％之間。對照和實驗組回收的BAL液的體積不存在統計學意義上的顯著差異。離心BAL後收集上清並保存於-70℃，以用於測試細胞因子。
用於脾細胞培養時，從BALB/c小鼠的脾臟製備單細胞懸液，並在包被以抗-CD3 Abs(1μg/ml；克隆17A2，PharMingen，San Diego，CA)的孔內培養。應用ELISA試劑盒(R D Systems，Minneapolis，MN)從BALF和24-h培養上清中測試IFN-γ。
總IgA抗體試驗從鼻洗液中收集IgA抗體，按如下所述進行Matsuo K，等2000，流感疫苗與佐劑(霍亂毒素)聯合經鼻施用誘導天然免疫，疫苗(Vaccine)，182713。將注射針插入鼻咽部較晚的開口，並將總量為1ml的含0.1％牛血清白蛋白(BSA)的磷酸鹽緩衝液(PBS)注入開口三次；收集流出液作為鼻洗液。離心鼻洗液以移除細胞殘渣並用於Ab試驗。進行總IgA抗體測試時，將ELISA平板用200ng/孔的抗小鼠IgA抗體(02271D，Pharmingen，San Diego，CA)4℃過夜包被。洗滌三次後，加入樣本並於室溫孵育2小時。再次洗滌後，加入生物素標記的抗小鼠IgA(556978，Pharmingen，SanDiego，CA)抗體並將平板繼續孵育2小時。三次洗滌後，加入抗生物素蛋白過氧化物酶共軛物(1∶10,000，Sigma Chemicals，St.Louis，MO)，並將平板繼續孵育1小時。加入底物四甲基聯苯胺(Phariningen，San Diego，CA)顯色後，應用自動-ELISA讀數儀在450nm處讀取吸光度。
抗-RSV抗體試驗為定量抗RSV抗體的滴度，用純化的RSV(200ng/孔)4℃過夜包被ELISA平板。洗滌平板並用封閉緩衝液(含1％BSA的PBS，pH 7.4)於37℃封閉1小時。將樣本加到平板並於37℃孵育2小時。再次洗滌平板並加入1∶10,000稀釋的抗小鼠IgG過氧化物酶共軛物(Boehringer Manheim，Germany)，並孵育1小時。三次洗滌後，加入底物，且進行20-30分鐘的顯色。應用自動-ELISA讀數儀在450nm處讀取吸光度。
病毒中和試驗在第14天獲得的不同稀釋度的血清與100μl的RSV接種物混合，並於37℃孵育1小時。混合物用於感染在48孔培養板培養的HEp-2培養物。測定RSV滴度。
免疫印跡將30微克的經RSV感染的HEp-2細胞的提取物在4-20％梯度的SDS-PAGE進行分級，並轉移到硝酸纖維素膜上。用封閉緩衝液(含5％w/v脫脂奶粉的TBS-0.1％吐溫20，pH 7.6)封閉膜並與從不同免疫組小鼠收集的1∶250稀釋度的血清於4℃過夜孵育。在洗滌緩衝液(TBS-0.1％吐溫-20，pH 7.6)中洗滌膜四次並與抗小鼠IgG過氧化物酶共軛物於室溫孵育1小時。繼續洗滌四次後，加入ECL化學發光檢測試劑(0.125ml/cm2)進行印跡染色，前述操作根據生產商的使用說明(Amersham Life Sciences，ArlingtonHeights，IL)進行。
組織學觀察及呼吸道感染評分氣管內注射PBS後注射10％中性緩衝福馬林溶液(Sigma Chemicals，St.Louis，MO)使肺臟膨脹，以將肺部結構保存於膨脹狀態。肺臟轉移到80％乙醇溶液1小時，然後包埋在石蠟中。用蘇木素和伊紅對切片染色。對肺切片中的炎性細胞進行半定量評估，所述肺切片包括肺泡間質、支氣管肺泡束和間質組織。通過形態學評估炎性浸潤的部位、厚度和細胞成分。
CTL研究在完全RPMI中孵育PBS、GXV和裸DNA免疫的小鼠脾細胞(2.5×106細胞/mL)，所述完全RPMI含10U/mL的IL-2和2.5×106細胞/mL的RSV持續感染的經絲裂黴素(Sigma，St Louis，MO)處理的纖維母細胞(BCH4細胞)。在第6天向51Cr-標記的RSV-持續感染(BCH4)或未感染(BC)靶細胞(1×104)的同源纖維母細胞中加入不同數量的效應細胞測試培養物的抗原特異性裂解。37℃孵育5小時後，收穫細胞上清，在γ計數器中測定51Cr。特異裂解百分數按以下計算[(實驗cpm-自發cpm)/(總cpm-自發cpm)]×100。靶細胞僅與培養基孵育或在加入2.5％Triton X-100孵育後測定的值分別為自發釋放和總釋放。
結果黏膜GXV免疫安全且有效為測定鼻內施用質粒混合物後RSV抗原在肺臟中的表達，通過RT-PCR在mRNA水平測定所有cDNA的表達。9個質粒中的7個可測出mRNA的表達，包括NS1、NS2、M、SH、F、M2和N。所有mRNA均為預期大小。不同mRNA間的表達存在數量差異。這些結果表明鼻內施用質粒可容易地在肺細胞中表達編碼抗原。
RSV疫苗的最主要的擔心是炎症增強。為測試鼻內施用GXV疫苗是否可引起呼吸道高反應性，在三組動物中測定基線暫停增加百分比(Penh)，三組動物包括PBS對照、裸質粒混合物免疫動物或GXV疫苗免疫動物。與接受裸DNA或僅接受PBS(對照)的動物相比，接受GXV疫苗的動物對乙醯甲基膽鹼攻擊呈現出類似的反應。這些結果提示GXV疫苗並不引起呼吸道高反應性。
為檢測疫苗的效果，BALB/c小鼠鼻內施用GXV疫苗或裸DNA。動物在第16天感染RSV且在4天後(第21天)處死。移出肺臟並將肺臟的勻漿用於RSV空斑試驗。與PBS對照和裸DNA混合物相比，GXV疫苗免疫小鼠的RSV滴度顯著降低(2到3倍)。肺臟病毒滴度的降低被認為是評判疫苗有效性的金標準。這些結果表明脫乙醯殼多糖提高了pDNA疫苗的功效且GXV為抗RSV感染提供了有效疫苗。
GXV降低了RSV感染誘發的肺部炎症在接受GXV疫苗及裸質粒DNA混合物的小鼠組中檢測肺部炎症，並與用生理鹽水處理的對照小鼠進行比較。與裸質粒免疫組和對照相比，接受GXV疫苗的小鼠組上皮損傷較輕，間質和支氣管血管周區的單核細胞(MNC)和多形核白細胞(PMNC)浸潤減少。PBS組與正常未感染小鼠的肺臟組織學類似，裸DNA免疫出現上皮細胞破壞，而GXV免疫小鼠顯示出與正常小鼠相當的肺臟表型。這些結果表明GXV疫苗保護小鼠免受RSV感染所誘發的肺部炎症。
GXV誘發抗RSV抗體反應為確定經黏膜施用GXV疫苗是否可在小鼠中誘導產生特異抗體，測定了施用裸質粒混合物或GXV疫苗的小鼠中RSV特異抗體滴度。用GXV疫苗免疫的動物的抗體滴度顯著高於對照動物。由於鼻是RSV的主要侵入部位，因此認為分泌型IgA抗體對黏膜病原感染起到保護作用。測量鼻洗液中總IgA抗體水平以證實該類抗體水平的變化是否是由於疫苗接種的結果。用GXV疫苗免疫的動物的IgA抗體滴度顯著高於對照動物。這些結果表明GXV疫苗誘導血清中抗體特別是IgA的分泌。
GXV誘導IFN-γ在肺臟和脾臟中的表達IFN-γ為主要的抗病毒細胞因子，因此疫苗必須誘導IFN-γ表達才能發揮效應。為確定GXV疫苗是否誘導IFN-γ的表達，用GXV疫苗免疫小鼠，然後在第16天感染RSV。在第21天處死動物，進行支氣管肺泡灌洗並體外培養其脾細胞。GXV免疫的小鼠在其BAL液中產生的IFN-γ顯著高於對照組。此外，用抗-CD3抗體刺激培養的脾細胞時，GXV免疫的小鼠產生的IFN-γ多於對照組小鼠。
統計學分析用學生t檢驗對兩組間進行比較。p＜0.05時即認為組間差異顯著。所有檢測數值以平均值±SD表述。數據在表1中顯示。表1中的每一數值代表一組(n＝4)中每隻鼠的6個單獨肺切片中5個視野的平均值±SD。小鼠組的統計學分析顯示，免疫小鼠的抗原載量(77％)顯著低於PBS對照組，圖2B。這些結果表明，脫乙醯殼多糖提高了pDNA疫苗的功效，且GXV提供了抗RSV感染的有效疫苗。為檢測鼻內施用GXV是否引起呼吸道高反應性，在所有的三組動物中測定％基線暫停增加(Penh)。與接受裸DNA或僅接受PBS(對照)的動物相比，接受GXV的動物表現出類似的對乙醯甲基膽鹼攻擊的反應，圖2C。這些結果提示，GXV處理本身並不引起呼吸道高反應性的任何顯著變化。
血清和黏膜反應均為疫苗有效性的重要組分。由於鼻通路是RSV的主要侵入部位，因此認為分泌型IgA抗體對黏膜病原感染起到保護作用。鼻內施用的GXV在小鼠中誘導產生特異抗體，測定施用裸質粒混合物或GXV的小鼠的RSV特異抗體的滴度。GXV免疫動物的血清抗體滴度顯著高於對照組動物，圖3A。將RSV與從免疫小鼠獲得的血清孵育可降低病毒對HEp-2細胞的感染，表明免疫後產生了中和抗體，圖3B。與接受裸DNA的小鼠相比，GXV小鼠的中和抗體滴度顯著升高，上述兩組均與對照組存在顯著差異。鼻洗液中檢測出的總IgA抗體的水平證實此類抗體的變化是由於GXV免疫的結果。GXV免疫動物的IgA抗體滴度顯著高於對照動物，圖3C。這些結果表明GXV使血清和鼻IgA中的中和抗體產量提高。差異表述為與PBS對照相比a；P＜0.05，aa；P＜0.01以及aaa；P＜0.001；b；與裸DNA相比P＜0.05。
表1半定量分析病理學PBS 裸DNAGXV上皮損傷 2.53±0.17 2.25±0.30 1.4±0.52aab間質-肺泡浸潤 2.66±0.21 2.36±0.33 1.76±0.35aaa支氣管血管周浸潤 2.01±0.20 1.81±0.57 1.46±0.23a鼻內施用GXV導致組成型RSV抗原的有效表達，應用RT-PCR和western印跡分析檢測小鼠的肺組織。特定GXV的肺mRNA的RT-PCR分析結果顯示，GXV編碼的所有mRNA在肺組織中均可檢測到，圖1A。這些mRNAs翻譯並產生足夠免疫原的證據通過從這些鼠收集的合併血清(n＝4)中獲得，前述血清在western印跡分析中可與RSV感染的Hep-2細胞上清中存在的多種RSV抗原進行反應，圖1B。這些結果表明GXV誘導產生引起抗體反應的RSV抗原。
小鼠施用單劑GXV(DNA總量為25μg)或生理鹽水溶解的裸DNA(對照)。急性活病毒感染後肺病毒滴度分析顯示，與PBS對照相比GXV小鼠中的RSV滴度顯著降低(100倍)，圖2A。施用裸DNA的小鼠的滴度與PBS對照類似，提示經鼻內途徑施用時裸DNA並不有效。檢測免疫及對照小鼠的總RSV抗原載量，GXV免疫的小鼠用於分析脾中RSV特異的CTL的存在，所述檢測應用持續RSV感染的BCH4作為靶細胞且應用RSV陰性的BC細胞作為對照。PBS或裸DNA對照並不引起可檢測的CTL反應。相反，用GXV免疫的小鼠產生CTL反應，圖4A，且這些CTL顯示為CD8+和MHC I類限制性的(數據未顯示)。IFN-γ被認為是主要的抗病毒細胞因子。因此，有效的疫苗必須能夠誘導IFN-γ的表達。從GXV免疫和對照組小鼠的培養脾細胞和支氣管肺泡灌洗(BAL)中測試IFN-γ。GXV免疫小鼠在其BAL液中產生的IFN-γ明顯多於對照小鼠，圖4B。GXV免疫小鼠的培養脾細胞用抗CD3抗體刺激後產生的IFN-γ多於對照小鼠，圖4C。
在不同組的小鼠中檢測肺炎症。代表性病理特徵在圖5A中顯示。接受GXV疫苗組的小鼠與對照相比，其上皮損傷較輕，單核細胞(MNC)和多形核細胞(PMNC)在間隙和支氣管血管周區的浸潤減少，圖5。PBS組和裸DNA組的上皮細胞出現損壞，而GXV免疫小鼠顯示與正常小鼠相當的肺表型(數據未顯示)。這些結果表明，GXV疫苗保護小鼠免受RSV感染誘發的肺部炎症。應用用於肺部炎症評分系統的半定量分析在表1中顯示。接受GXV疫苗組的小鼠上皮損傷減輕(與PBS組相比P＜0.01，且與裸DNA組相比P＜0.05)且與裸DNA和PBS對照相比肺部炎症減弱。與PBS對照相比，接受GXV組的小鼠間質肺泡浸潤(P＜0.01)和支氣管血管周浸潤(P＜0.05)減輕。用裸DNA對照組未發現統計學顯著差異。這些結果顯示，GXV可保護小鼠免受RSV感染誘發的肺部炎症。
在此申請中，涉及多種出版物。這些出版物全部引用作為參考併入本申請，以更完整地描述屬於本發明的領域。
以上描述的實施例僅用於示例的目的，且並不意在限定本發明的範圍或實施方案。並未特別描述的其他實施方案為領域內的普通技術人員所熟知。由此應認為這些實施方案位於本發明的範圍和精神之內。因此，本發明僅由以下的權利要求所正確限定。
權利要求
1.用於保護宿主免受由呼吸道合胞病毒(RSV)所導致疾病的免疫原性組合物，其包含F RSV抗原；G RSV抗原；以及至少一種M、M2、SH、NS1、NS2、N或P RSV抗原。
2.權利要求1的免疫原性組合物，其中所述組合物為黏膜疫苗。
3.用於保護宿主免受由呼吸道合胞病毒(RSV)所導致疾病的免疫原性組合物，其包含M2 RSV抗原；以及至少一種F、G、M、SH、NS1、NS2、N或P RSV抗原。
4.權利要求3的免疫原性組合物，其中所述組合物為黏膜疫苗。
5.用於保護宿主免受由呼吸道合胞病毒(RSV)所導致疾病的免疫原性組合物，其包含F RSV抗原；G RSV抗原；M2 RSV抗原；以及至少一種M、SH、NS1、NS2、N或P RSV抗原。
6.權利要求5的免疫原性組合物，其中所述組合物為黏膜疫苗。
7.用於保護宿主免受由呼吸道合胞病毒(RSV)所導致疾病的基因表達疫苗，其包含含有至少兩種RSV抗原的組合的質粒DNA混合物，所述RSV抗原選自F、G、M、M2、SH、NS1、NS2、N和P；其中所述質粒DNA混合物與脫乙醯殼多糖團聚以形成納球。
8.權利要求7的基因表達疫苗，其中疫苗施用並不引起呼吸道高反應性。
9.權利要求7的基因表達疫苗，其中所述疫苗為黏膜疫苗。
10.權利要求9的基因表達疫苗，其中所述黏膜疫苗有利於經口施用。
11.權利要求9的基因表達疫苗，其中所述黏膜疫苗有利於鼻內施用。
12.權利要求7的基因表達疫苗，其中所述疫苗的施用誘導IFN-γ的表達。
13.免疫宿主以使其免受呼吸道合胞病毒(RSV)感染所引起疾病的方法，其包括向所述宿主施用免疫有效量的組合物，所述組合物包含含有至少兩種RSV抗原的組合的質粒DNA混合物，所述RSV抗原選自F、G、M、M2、SH、NS1、NS2、N和P；其中所述質粒DNA混合物與脫乙醯殼多糖團聚以形成納球。
14.權利要求13的方法，其中所述施用為經口或鼻內施用。
15.權利要求13的方法，其中所述施用並不誘發呼吸道高反應性。
16.權利要求13的方法，其中所述免疫有效量以單劑量施用。
17.權利要求13的方法，其中所述免疫有效量為約1mg/kg宿主重量。
18.製備基因表達疫苗的方法，其包括在pVAX質粒中克隆入至少兩種呼吸道合胞病毒抗原的cDNA以形成質粒DNA混合物；以及將質粒DNA混合物與脫乙醯殼多糖團聚。
19.權利要求18的方法，其中所述團聚步驟導致形成納球。
20.權利要求18的方法，其中呼吸道合胞病毒抗原選自F、G、M、M2、SH、NS1、NS2、N和P。
全文摘要
一種有效的預防性黏膜基因表達疫苗(GXV)，由編碼相應RSV抗原的至少4種不同的質粒DNA混合物組成，與脫乙醯殼多糖團聚以形成納球。在RSV感染的鼠模型中，鼻內施用GXV導致顯著地誘導產生RSV特異抗體、鼻IgA抗體、細胞毒T淋巴細胞以及顯著增加肺和脾細胞中IFN－γ的產生。單劑量的GXV使病毒滴度顯著降低。
文檔編號A61P17/02GK1578672SQ02821492
公開日2005年2月9日 申請日期2002年2月12日 優先權日2001年9月28日
發明者S·S·莫哈普特拉, M·庫馬爾, S-K·黃, K·W·萊翁 申請人:南佛羅裡達大學, 約翰斯·霍普金斯大學