一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法及其應用
2024-04-13 04:22:05
1.本發明涉及水產養殖技術領域，具體涉及一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法及其應用。
背景技術：
2.近年來，隨著人們對於水產品需求量的提高，水產養殖業發展勢頭迅猛，極大地促進了水產動物人工繁育工作的開展，在水產動物育苗過程中，除了應用微藻、輪蟲、滷蟲生物餌料為開口餌料外，橈足類因為其諸多優點而受到人們的關注。
3.橈足類的生長過程中需經過11-12個時期的變態，才能發育為成體，其大小為100-1000μm，可為水產動物幼體提供不同口徑的開口餌料。橈足類營養豐富，富含epa和dha，dha是強化滷蟲的10倍以上，高含量的dha在一些海水魚幼體發育階段，對其幼體正常色素沉著和神經具有重要作用。橈足類無節幼體還含有較高的磷脂能滿足魚蝦幼體生長所需，不僅容易消化，還可促進對其他脂類的吸收和轉運。由於其諸多優點，橈足類被認為是極佳的活體餌料。有鑑於此，亟需實現橈足類的大規模培養及營養強化以滿足水產養殖市場對動物性開口餌料的需要。
4.目前，橈足類的培養方法主要是室外粗放式養殖和室內集約化養殖兩種方式，室外粗放式養殖一般選用室外池塘培養橈足。早在1986年至1994年期間，在挪威，利用池塘培養橈足的同時放入鱈幼體取得了很好的效果。但是這種培育方法受到水體中微藻豐度和天氣變化的影響較大，故存在產量極不穩定，持續時間不長，容易受到病毒和細菌的汙染等問題。室內集約化養殖始於20世紀90年代，人們旨在通過對橈足的大規模培養以實現替代滷蟲無節幼體的目的。橈足類的一些種類，如克氏紡錘水蚤、湯氏紡錘水蚤、真寬水蚤等由於對環境的適應性強，從而成為了集約化培養的對象。這些種類的特點為個體小、繁殖速度快、適溫範圍廣，既適合實驗室內培養又極易在室外形成優勢種群。相較於室外池塘培養，集約化培養的產量穩定、受自然的影響小，質量有保證，但是生產成本高。
技術實現要素：
5.有鑑於此，本發明的目的在於提供一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法，可實現安氏偽鏢水蚤的大規模培養，為不同發育階段海洋生物提供不同口徑的優質生物餌料。
6.為解決上述技術問題，本發明提供了以下技術方案：
7.本發明提供了一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法，所述方法包括以下步驟：
8.(1)安氏偽鏢水蚤成體的採集和挑選；
9.(2)一級培養：將挑選所得安氏偽鏢水蚤成體接種於海水中，投餵海鏈藻、角毛藻、金藻中一種或多種微藻至產生幼體，然後採用125-150μm的篩絹網將所述幼體濾出；
10.(3)二級培養：收集步驟(2)濾出幼體進行培養，投餵金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至成體，發育到成體後補充投餵光合細菌直至掛卵，收集所產幼體；
11.(4)三級培養：將二級培養所得幼體置於柱式光生物反應器進行培養，投餵湛江等
邊金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至橈足幼體階段，然後投餵搓洗的蝦片至成體。
12.優選的，採用孔徑為0.112mm的浮遊生物網以倒8的方式在海水錶層拖濾1-3min採集安氏偽鏢水蚤。
13.優選的，根據採集到的安氏偽鏢水蚤的特徵挑選獲得安氏偽鏢水蚤成體。
14.優選的，所述步驟(2)中海水的溫度為25-30℃，鹽度為23，光照強度為1000lux，光照周期為12h:12h。
15.優選的，所述步驟(3)中培養的條件為：鹽度20-30，ph7.5-8.5，光照強度8000lux，光照周期為12h:12h。
16.優選的，所述步驟(3)中掛卵的成體密度為3000-5000個/l。
17.優選的，所述步驟(4)中培養的方式為開放式半充氣半連續方式。
18.優選的，所述柱式光生物反應器包括固定支架、支架腿、支架腳託、反應器主體、連接裝置、閥門、可更換的不同孔徑篩絹網。
19.優選的，所述步驟(4)中培養的條件為：溫度30-35℃，鹽度23-30。
20.本發明還提供了上述的分段培養方法在水產養殖中的應用。
21.本發明提供了一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法，將安氏偽鏢水蚤親本通過營養強化和環境調控促進其母體掛卵，親本交配，母體產幼，將親本與幼體分離，將所產幼體進行收集，飼餵不同餌料對其進行營養強化，使其營養更加全面的同時實現了數量的不斷擴大。經試驗證實可知，通過本發明所述分段培養方法可實現安氏偽鏢水蚤的大規模培養，能夠提高安氏偽鏢水蚤的密度，使其密度達到5-8個/ml，更有效的提高水產動物幼苗的存活率和生長速度，為水產養殖業優質生物餌料的開發奠定基礎。
附圖說明
22.圖1為柱式光生物反應器結構圖。
23.圖2為不同親本密度條件下無節幼體的數量。
24.圖3為餵食不同微藻餌料對安氏偽鏢水蚤幼體的影響，其中，a為餵食不同微藻餌料的安氏偽鏢水蚤幼體在發育時間上的差異，b為餵食不同微藻餌料的安氏偽鏢水蚤幼體在存活率上的差異。
25.圖4為添加光合細菌對安氏偽鏢水蚤幼體的影響，其中，a為添加光合細菌對安氏偽鏢水蚤幼體發育時間的影響，b為添加光合細菌對安氏偽鏢水蚤幼體存活率的影響。
具體實施方式
26.本發明提供了一種安氏偽鏢水蚤的分段培養方法，所述方法包括以下步驟：
27.(1)安氏偽鏢水蚤成體的採集和挑選；
28.(2)一級培養：將挑選所得安氏偽鏢水蚤成體接種於海水中，投餵海鏈藻、角毛藻、金藻中一種或多種微藻至產生幼體，然後採用125-150μm的篩絹網將所述幼體濾出；
29.(3)二級培養：收集步驟(2)濾出幼體進行培養，投餵金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至成體，發育到成體後補充投餵光合細菌直至掛卵，收集所產幼體；
30.(4)三級培養：將二級培養所得幼體置於柱式光生物反應器進行培養，投餵湛江等邊金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至橈足幼體階段，然後投餵搓洗的蝦片至成體。
31.本發明中，優選的採用孔徑為0.112mm的浮遊生物網以倒8的方式在海水錶層拖濾1-3min採集安氏偽鏢水蚤；所述浮遊生物網優選為13號浮遊生物網。本發明根據採集到的安氏偽鏢水蚤的特徵挑選獲得安氏偽鏢水蚤成體；所述安氏偽鏢水蚤的特徵優選的在解剖鏡下進行觀察，所述安氏偽鏢水蚤成體優選為發育至性成熟的雌雄性。本發明中，所述特徵優選的包括：雌性：體長1.1-1.3mm，頭部與第一胸節癒合；胸部後側角鈍圓，末緣均具1列小齒；腹部生殖節基部兩側各具1鉤狀刺突，腹面生殖孔後緣具1倒鉤刺；尾叉長約為寬的2.5倍，尾剛毛短小，外側第3尾剛毛基部膨大；第5對胸足單肢型且對稱，第3節長大並具1外末刺，第4節寬短，內末角延伸為羽狀粗刺，外末緣也具1小刺，末節狹長呈刺狀，其長度約為前節長的4倍，其內緣基部也具1小刺；雄性：體長1.0-1.1mm，胸部後側角鈍圓，背末緣具1對小刺突；尾剛毛較長，且基部不膨大；第5對胸足不對稱，左足無內肢，第2節內緣突起很寬大，頂端鈍尖呈喙狀，第3節內緣具三角形突起，頂端具2小齒突，末節近長方形，外緣近端具1刺，內末緣具1小齒突；右足第2基節內緣具1粗刺狀的內肢，近末端具1小刺毛，外肢第1節外末刺長達下1節近末端，內緣突出並具1刺毛，第2節粗大，末節狹長而彎曲呈爪狀，其內緣基部隆起並具1小刺。
32.本發明將挑選所得安氏偽鏢水蚤成體接種於海水中，投餵海鏈藻、角毛藻、金藻中一種或多種微藻至產生幼體，然後採用125-150μm的篩絹網將所述幼體濾出。本發明中，所述海水的溫度優選為25-30℃，鹽度優選為23，光照強度優選為1000lux，光照周期為12h:12h。本發明中，所述海水優選的置於透明容器中，以便於觀察安氏偽鏢水蚤的發育情況，在本發明的具體實施例中，所述透明容器優選為透明塑料桶，所述透明塑料桶的體積優選為50-100l。本發明中，所述安氏偽鏢水蚤成體接種的密度優選為1個/ml，所述混合微藻的密度優選為1
×
10
4-1
×
105cell/ml。
33.本發明收集步驟(2)濾出幼體進行培養，投餵金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至成體，發育到成體後補充投餵光合細菌直至掛卵，收集所產幼體。本發明中，所述培養的容器優選為透明容器，在本發明的具體實施例中，所述透明容器優選為透明塑料桶，所述透明塑料桶的體積優選為50-100l。本發明中，所述幼體培養的密度優選為1個/ml；所述培養的條件優選為：鹽度20-30，ph7.5-8.5，光照強度8000lux，光照周期為12h:12h。本發明中，發育到成體後在投餵微藻的同時補充投餵光合細菌，所述光合細菌富含蛋白不僅可補充幼體營養還可起到淨化水質的作用。本發明中，所述掛卵的成體密度優選為3000-5000個/l，所產幼體的數量優選為7000-8000個/l。
34.本發明將二級培養所得幼體置於柱式光生物反應器進行培養，投餵湛江等邊金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種至橈足幼體階段，然後投餵搓洗的蝦片至成體。本發明中，所述培養的方式優選為開放式半充氣半連續方式；所述培養的條件優選為：溫度30-35℃，鹽度23-30。本發明中，所述柱式光生物反應器包括固定支架、支架腿、支架腳託、反應器主體、連接裝置、閥門、可更換的不同孔徑篩絹網。所述光生物反應器為全透明亞克力材質，底部具篩絹網，可通過開關使培養水體通過篩絹網得到大量的不同生長階段的幼體，再往反應器中加入消毒後的水體和餌料繼續培養。本發明中，所述培養階段蚤體的密度優選為1個/ml。本發明所述水蚤的整個生長發育過程包括無節幼體、橈足幼體和成體，在所述三級培養條件下，無節幼體發育經過60-80h發育到橈足幼體，經過150-180h發育到成體，然後即可根據生產需要適時採收適合口徑的幼體。
35.本發明還提供了上述的分段培養方法在水產養殖中的應用。
36.本發明中，所有培養階段均需進行充氧，優選的保證水體呈微波狀即可。
37.本發明中，所有的容器均採用碘液進行消毒，所述一級培養用海水使用前煮沸消毒，二級培養和三級培養用海水用50％強氯精按照每噸水20克的用量消毒，消毒處理12小時後，每噸水用10克硫代硫酸鈉中和，充氣24小時後可用。使用前，需試水，放一定量個體在消毒中和後的水中，觀察其生命體徵無異常後可用。
38.本發明中，所述一級培養的餌料為微藻，所述微藻的濃度為1
×
10
4-1
×
105個cell/l，所述微藻包括海鏈藻、角毛藻、金藻中的一種或幾種。本發明中，所述微藻的培養方法優選的包括如下步驟：將微藻種接種於微藻培養液中進行培養，所述培養的溫度為22-30℃，所述培養的光照強度為1200-2500lux。在本發明中，所述微藻種的培養方法優選包括如下步驟：將所需微藻藻種接種於微藻培養液中進行培養：藻種質量：選取未被無敵害生物汙染，生長旺盛、生活力強的藻類接種；藻類的數量：宜大不宜小，接種數量越多，可使藻類在培養過程中既佔優勢，又縮短培養周期；接種時間：接種時間選擇在上午8-10點，根據其趨光特性選取上浮運動能力強的藻類作為藻種。在本發明中，所述微藻培養的溫度優選為22-30℃，更優選為25-28℃；所述微藻培養的光照強度優選為1200-2500lux，更優選為1500-2000lux，最優選為1800lux。本發明對所述微藻培養的時間沒有特殊限定，採用本領域技術人員常規培養微藻的時間即可。本發明中，所述微藻培養液以二級培養和三級培養所使用的除氯海水為溶劑，包括以下濃度的組分：nano375.0mg/l、nah2po4·
h2o5.0mg/l、na2sio3·
9h2o30.0mg/l、微量金屬1ml/l；所述微量金屬包括以下組分：fecl3·
6h2o3.15g/l、na2edta
·
2h2o4.36g/l、cuso4·
5h2o9.8mg/l、na2moo4·
2h2o6.3mg/l、znso4·
7h2o22.0mg/l、cocl2·
6h2o10.0mg/l、mncl2·
h2o180.0mg/l。
39.本發明中，所述藻種由廣東海洋大學藻類資源與養殖環境修護團隊提供。
40.為使本發明的目的、技術方案和優點更加清楚明白，下面結合實施例對本發明進行詳細的說明，但是不能把它們理解為對本發明保護範圍的限定。
41.下述實施例中，如無特殊說明，均為常規方法。
42.下述實施例中所用的材料、試劑等，如無特殊說明，均可從商業途徑得到。
43.實施例1
44.安氏偽鏢水蚤不同發育階段的體長為：無節幼體：121-320μm，橈足幼體：325-860μm，成體：900-1200μm。
45.分段培養方法：
46.(1)浮遊動物的野外採集：按照浮遊動物定性檢測的採集方法，用13#浮遊生物網以緩慢的速度在水面拖曳「∞」約3分鐘，將採集而來的水樣裝入用碘液消毒後的容器中，儘快帶回實驗室分離。
47.(2)安氏偽鏢水蚤成體的挑選：在解剖鏡下挑出行動能力強的安氏偽鏢水蚤成體，挑選發育至性成熟的安氏偽鏢水蚤雌雄性。
48.(3)一級培養(保種)：將分離出的安氏偽鏢水蚤置於1000ml的錐形瓶中，保持水溫控制在25度，鹽度23，光照強度1000lux，光照周期12h:12h，並保證充氧，以水流呈現微波狀即可。接種密度為1個/ml，投餵餌料微藻為海鏈藻、角毛藻、金藻三種微藻混合投喂，密度保持在1
×
105cell/ml。觀察到水體中有幼體後及時用孔徑125μm的篩絹網將其濾出。親本的
生殖活動周期為40天左右，觀察到雌體生殖力明顯減弱或不再掛卵應將其進行淘汰，不再用於生產。
49.(4)二級培養(親本培養)：常用50l的透明塑料桶作為培養幼體的容器，收集同一批次一級培養所產幼體，使幼體密度為1個/ml。環境條件為鹽度為23、ph為8.0,光照強度為700lx，光暗比為12h:12h。幼體階段投餵金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種混合藻液，發育到成體後投餵微藻的同時增加光合細菌，發育到成體並掛卵後，每日收集所產幼體並全換水。
50.(5)三級培養(幼體培養)：以2t柱式光生物反應器作為培養容器，用於實現的光生物反應器如圖1。培養條件為溫度30-35℃，鹽度23-30，蚤體密度控制為1個/ml，採取一日多餐的投餵方式，無節幼體階段餌料為湛江等邊金藻、角毛藻和海鏈藻的一種或多種搭配飼喂，餌料濃度為30
×
104個/ml，橈足幼體後投餵搓洗的蝦片。在此條件下，無節幼體發育經過60-80h左右發育到橈足幼體，經過150-180h發育到成體可根據生產需要適時採收適合口徑的幼體。
51.其中，所述分段培養方法中安氏偽鏢水蚤的具體交配和選擇標準如下：
52.(1)將野外採集而來的安氏偽鏢水蚤，挑選行動活潑，肢體完整的個體置於適宜的環境中：溫度為20-35℃，鹽度為20-30、ph為7.5-8.5。在顯微鏡下可觀察到雌雄個體區別較為明顯:成熟的雄性個體具執握肢，雄性腹部兩側具棘突。
53.(2)條件適宜情況下，安氏偽鏢水蚤雌體會很快掛卵，卵存於卵囊中，雌雄交配時，兩腹正面相對，頭胸部各朝一頭，身體呈直線，此時應保持環境安靜，避免驚擾到交配活動的進行。交配時雄性將精莢置於雌性腹部，交配一次可供幾批卵受精發育，卵受精後經過胚胎發育產出無節幼體。自孵化後的無節幼體i期開始，每蛻皮一次，即進入新的發育階段。
54.利用人工培養技術，安氏偽鏢水蚤從無節幼體發育到第一次性成熟需要7-9天。對其進行分級培養，可使其密度達到5～10個/ml，顯著提高蚤體內epa、dha等成分的含量，使其營養價值更高，從而有效提高水產動物幼苗的存活率和生長速度。
55.實施例2
56.按照實施例1所述的方法步驟在湛江廢棄池塘(e110
°
31
′
46.46
″
n20
°
56
′
10.48
″
)採集安氏偽鏢水蚤並進行分段培養，其中分階段培養的步驟(3)一級培養時採用不同的親本密度進行分段培養，具體設置為：在1l水體中設置安氏偽鏢水蚤親本密度分別為200個/l、800個/l、2000個/l、5000個/l、7000個/l、9000個/l。設置實驗時間為7天，連續計數無節幼體的數量，每日換水，藻類投餵量為1mgc/l。實驗結果如表1和圖2所示：
57.表1不同親本密度對幼體數量影響結果
[0058][0059][0060]
可以看出，當密度為5000個/ml時，所產幼體數量最多，為7833個/ml。7天實驗周期
中，當密度為2000個/ml時，第6天時所產無節幼體數量僅次於最高產幼體數，親本密度控制為2-5個/ml，無節幼體的數量最高可達7.8個/ml。
[0061]
實施例3
[0062]
1.微藻餌料對安氏偽鏢水蚤發育和繁殖的影響
[0063]
(1)發育實驗
[0064]
在解剖鏡下挑選出健康活潑的剛孵出的nii期無節幼體10隻，放入15ml試管中，每根試管中加入新鮮海水10ml，並標記。培養條件為：溫度28℃，鹽度27，光照1200lx。每日投餵新鮮的餌料微藻，使水體中餌料濃度為1mgc/l(按含碳量計)，每日投餵1次，投餵前完全換水。實驗設置4個實驗組，分別投餵湛江等鞭金藻、牟氏角毛藻、海鏈藻以及小球藻，每個實驗組設置a和b兩組，a組用於無節幼體發育的觀察，b組用於橈足幼體發育的觀察，每組3個平行。開始時，每6小時觀察幼體發育情況，等幼體發育到n5期無節幼體和c4橈足幼體時，改為每2小時觀察一次。每次隨機抽取3-4個幼體進行觀察，觀察完立即把幼體放回原試管中，分別記錄無節幼體和橈足幼體的發育時間和存活率，結果如圖3。
[0065]
可以看出，不同微藻餌料對安氏偽鏢水蚤的發育時間有顯著影響(p《0.05)。在無節幼體到橈足幼體期，飼餵湛江等邊金藻的安氏偽鏢水蚤，其無節幼體到橈足幼體發育時間最短，為70h。其次是角毛藻組，其發育時間為74h，然後是海鏈藻組，其發育時間為84h。飼餵小球藻的安氏偽鏢水蚤無節幼體到橈足幼體的發育時間最長，需要93h。從整個發育階段來看，飼餵湛江等鞭金藻的幼體的發育時間同樣最短，為193h。其次是角毛藻組和海鏈藻組，其發育時間分別為212h和239h。飼餵小球藻的安氏偽鏢水蚤，其幼體發育到成體的時間在四組中最長，需要258h。
[0066]
從個體存活率數據來看，在無節幼體到橈足幼體階段，飼餵湛江等鞭金藻的安氏偽鏢水蚤幼體的存活率最高，為90％，其次是角毛藻組和海鏈藻組，其幼體存活率分別為83％和80％。飼餵小球藻的安氏偽鏢水蚤的幼體存活率最低，為67％。從整個發育階段來看，飼餵湛江等鞭金藻的安氏偽鏢水蚤，其幼體存活率顯著高於其他三組，達到60％。飼餵海鏈藻、角毛藻和小球藻的安氏偽鏢水蚤，其橈足幼體的存活率均低於50％，分別為47％、43％和40％。以上結果表明，飼餵湛江等鞭金藻有利於安氏偽鏢水蚤無節幼體到橈足幼體和橈足幼體到成體的生長、存活。
[0067]
(2)繁殖實驗
[0068]
在解剖鏡下挑選出成熟的雄性和掛卵的雌性安氏偽鏢水蚤各1隻放入15ml試管中，每根試管中加入新鮮海水10ml。實驗設置4個實驗組，分別投餵湛江等鞭金藻、牟氏角毛藻、海鏈藻以及小球藻，每個實驗組設3個平行，每日投餵一次，餌料微藻的濃度(按含碳量計)控制為1.0mgc/l。每日觀察安氏偽鏢水蚤的產幼情況，發現產幼及時對其進行計數，並挑出親體置於新鮮的藻液中繼續培養。實驗連續進行10天，記錄產幼次數和產幼數量，結果如表2。
[0069]
表2飼餵不同微藻餌料的安氏偽鏢水蚤在總產幼體數、每次產卵量和生殖次數上的差異
[0070][0071]
可以看出，飼餵不同微藻餌料的安氏偽鏢水蚤，在總產幼體數、每次產卵量和生殖次數方面存在明顯差異。
[0072]
2.餌料微藻添加光合細菌對安氏偽鏢水蚤發育和繁殖的影響
[0073]
(1)發育實驗
[0074]
在解剖鏡下挑選出健康活潑的剛孵出nii期無節幼體10隻，放入15ml試管中，每根試管中加入新鮮海水10ml，並標記。微藻餌料為湛江等鞭金藻。光合細菌購自於廣東綠百多生物開發有限公司，其活菌數量》0.5
×
108cfu/ml。實驗共設置5個實驗組，每組每次除了使水體中微藻濃度為1mgc/l外，還分別投餵不同比例光合細菌。光合細菌的投餵方法：將光合細菌用8000rpm的速度離心掉培養基後加蒸餾水稀釋後投餵橈足，使水體中光合細菌濃度分別為：0mgc/l、0.25mgc/l、0.5mgc/l、1mgc/l以及2mgc/l。每個實驗組設置a和b兩組，a組用於無節幼體發育的觀察，b組用於橈足幼體發育的觀察，每組3個平行。培養條件和觀察方法同步驟1。實驗結果如圖4。
[0075]
可以看出，光合細菌的添加對安氏偽鏢水蚤幼體的發育時間有顯著影響(p《0.05)。在無節幼體到橈足幼體發育階段，在投餵等量微藻餌料的條件下，添加的光合細菌可以縮短幼體的發育時間。其中，當添加的光合細菌濃度達到1mgc/l時，無幼體所需時間最短，為56
±
0.00h，與對照組(0mgc/l)相比，發育時間縮短了約20％。當添加的光合細菌濃度為0.25mgc/l、0.5mgc/l和2mgc/l時，幼體發育時間均比對照組有小幅度縮短，分別為67.33
±
0.47h、67.33
±
0.47h和66
±
0.00h。在整個發育階段，投餵等量微藻餌料的條件下，添加光合細菌可以顯著影響幼體的發育時間。當光合細菌濃度為0.25mgc/l和0.5mgc/l兩個實驗組的幼體發育時間分別達到184
±
3.30h和183
±
4.24h，與對照組相比均有小幅度縮短。當添加的光合細菌濃度為1mgc/l時，幼體發育到成體所需的時間最短，為165
±
3.56h，與對照組(0mgc/l)相比，發育時間縮短了約14.5％。當添加的光合細菌濃度為2mgc/l時，幼體發育到成體所需的時間最長，為210
±
0.00h。
[0076]
在個體存活率方面，除了1mgc/l實驗組達到了對照組的水平(90％)以外，其餘實驗組的存活率均顯著低於對照組。當光合細菌濃度為0.5mgc/l時，無節幼體的存活率最低，為63％
±
4.71％。在整個發育階段，添加光合細菌的濃度為0.5mgc/l和1mgc/l的兩組橈足幼體存活率分別達到67
±
4.16％和73
±
1.57％，與對照組相比，分別提高了約12％和22％。而光合細菌濃度為0.25mgc/l和2mgc/l的兩個實驗組橈足幼體存活率顯著低於對照組，其中，當添加的光合細菌濃度為2mgc/l時，橈足幼體的存活率最低，為47％
±
3.14％。
[0077]
(2)繁殖實驗
[0078]
在解剖鏡下挑選出成熟的雄性和掛卵的雌性安氏偽鏢水蚤各1隻放入15ml試管中，每根試管中加入新鮮海水10ml。實驗共設置5個實驗組，每組除使水體中微藻為1mgc/l
外，還分別投餵不同比例的光合細菌，投餵方法同步驟1中的發育實驗。每組設置3個平行。每天觀察安氏偽鏢水蚤的產幼情況，發現產幼及時對其進行計數，並挑出親體置於新鮮的藻液中繼續培養。實驗連續進行10天，記錄產幼次數和產幼數量，結果如表3。
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表3添加光合細菌對安氏偽鏢水蚤總產幼體數、每次產卵量和生殖次數的影響
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可見，在投餵等量微藻餌料的條件下，添加不同濃度的光合細菌對安氏偽鏢水蚤的總產幼體數、每次產卵量和生殖次數方面有顯著影響。
[0082]
以上所述僅為本發明的實施例，並非因此限制本發明的專利範圍，凡是利用本發明說明書內容所作的等效結構或等效流程變換，或直接或間接運用在其他相關的技術領域，均同理包括在本發明的專利保護範圍內。